دوره 21، شماره 7 - ( دو ماهنامه بهمن و اسفند 1397 )                   جلد 21 شماره 7 صفحات 28-38 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


1- گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم و فن‌آوری‌های نوین، واحد علوم دارویی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
2- دانشگاه تهران ، jhamedi@ut.ac.ir
چکیده:   (316 مشاهده)
زمینه و هدف: استفاده گسترده از آنتی بیوتیکها منجر به افزایش باکتریهای مقاوم به آنتیبیوتیک و نرخ بالای مرگومیر در اثر بیماریهای عفونی شده است.
Pseudomonas aeruginosa یکی از مهمترین عوامل ایجادکننده عفونتهای بیمارستانی است که به طیف وسیعی از آنتی بیوتیکها مقاوم است. بنابراین یافتن منبع جدید ترکیبات ضدمیکروبی برای غلبه بر بیماریهای عفونی مقاوم به آنتی بیوتیک کاملاً حیاتی است. غربالگری اکتینوباکترهای بومی راهکاری موثر به منظور یافتن ترکیبات ضدمیکروبی جدید است. هدف پژوهش حاضر جداسازی، غربالگری و شناسایی اکتینوباکترهای نادر و بومی ایران به منظور یافتن سویه‌های اکتینوباکتر مولد ترکیبات ضدمیکروبی علیه P. aeruginosa است.
مواد و روشها: 30 نمونه آب و رسوب از خلیجفارس و دریایعمان جمعآوری و برای جداسازی اکتینوباکترها در محیط مناسب کشت شد. جدایههای اکتینوباکتر تخلیص شدند و پس از استخراج متابولیتها، فعالیت ‌آن‌ها بر علیهP. aeruginosa ‌ بررسی شد. حداقل غلظت مهارکننده رشد (MIC) عصاره برتر با روش میکرودایلوشن براث تعیین و در نهایت سویه برتر شناسایی شد.
ملاحظات اخلاقی: در مطالعه حاضر، تمامی اصول ایمنی زیستی و اخلاق زیستی رعایت شده است.
یافتهها: 50 اکتینوباکتر از رسوبات مورد بررسی جداسازی شدند. نتایج نشان داد که 5 جدایه دارای فعالیت ضدمیکروبی قابلتوجهی هستند. MIC عصاره برتر علیه
P. aeruginosa، 100 میکروگرم در میلیلیتر بود. آنالیز مولکولی ژن SrRNA16 نشان داد که جدایه دارای موثرترین عصاره متعلق به جنس Micromonospora بوده و 8/99 درصد شباهت بهM. chalcea  دارد.
نتیجهگیری: این پژوهش نشان داد که آبهای جنوب ایران و رسوبات موجود در ‌آن‌ها منابع نویدبخشی از اکتینوباکترهای نادر توانمند در تولید ترکیبات میکروبی علیه P. aeruginosa میباشند.
متن کامل [PDF 626 kb]   (118 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي اصیل | موضوع مقاله: عفوني
دریافت: ۱۳۹۶/۲/۲۴ | پذیرش: ۱۳۹۷/۹/۱۲
* نشانی نویسنده مسئول: گروه زیست فن‌آوری میکروبی، دانشکده زیست شناسی و قطب تبارزایی موجودات زنده، پردیس علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران. مرکز پژوهشی فن‌آوری‌ها و فرآورده‌های میکروبی، دانشگاه تهران، تهران، ایران.

فهرست منابع
1. Okeke IN. Poverty and root causes of resistance in developing countries. InAntimicrobial resistance in developing countries Springer, New York, NY. 2010. 27-35.
2. Parkins MD, Gregson DB, Pitout JD, Ross T, Laupland KB. Population-based study of the epidemiology and the risk factors for Pseudomonas aeruginosa bloodstream infection. Infection. 2010; 38(1):25-32.
3. Johnson LE, D'agata EM, Paterson DL, Clarke L, Qureshi ZA, Potoski BA, Peleg AY. Pseudomonas aeruginosa bacteremia over a 10‐year period: multidrug resistance and outcomes in transplant recipients. Transpl Infect Dis. 2009; 11(3):227-34.
4. Wiegand I, Marr AK, Breidenstein EB, Schurek KN, Taylor P, Hancock RE. Mutator genes giving rise to decreased antibiotic susceptibility in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob. Agents Chemother. 2008; 52(10):3810-3.
5. Baumgart AM, Molinari MA, Silveira AC. Prevalence of carbapenem resistant Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii in high complexity hospital. Braz J Infect Dis. 2010; 14(5):433-6.
6. Tuon FF, Gortz LW, Rocha JL. Risk factors for pan-resistant Pseudomonas aeruginosa bacteremia and the adequacy of antibiotic therapy. Braz J Infect Dis. 2012; 16(4):351-6.
7. Khan ST, Takagi M, Shin-ya K. Actinobacteria associated with the marine sponges Cinachyra sp., Petrosia sp., and Ulosa sp. and their culturability. Microbes Environ. 2012; 27(1):99-104.
8. Wilke MS, Heller M, Creagh AL, Haynes CA, McIntosh LP, Poole K, Strynadka NC. The crystal structure of MexR from Pseudomonas aeruginosa in complex with its antirepressor ArmR. Proc Natl Acad Sci 2008; 105(39):14832-7.
9. Luo HY, Wang YR, Miao LH, Yang PL, Shi PJ, Fang CX, Yao B, Fan YL. Nesterenkonia alba sp. nov., an alkaliphilic actinobacterium isolated from the black liquor treatment system of a cotton pulp mill. Int J Syst Evol Microbiol. 2009; 59(4):863-8.
10. Jensen PR, Lauro FM. An assessment of actinobacterial diversity in the marine environment. Antonie Van Leeuwenhoek. 2008; 94(1):51-62.
11. Gulve RM, Deshmukh AM. Antimicrobial activity of the marine actinomycetes. Int Interdiscip Res J. 2012; 2(3).
12. Takizawa M, Colwell RR, Hill RT. Isolation and diversity of actinomycetes in the Chesapeake Bay. Appl Environ Microbiol. 1993; 59(4):997-1002.
13. Bertani LE, Bertani G. Genetics of P2 and related phages. Adv Genet 1971, (16): 199-237.
14. Salehi M, Hekmatdoost M, Hosseini F. Quinolone resistance associated with efllux pumps mexAB-oprM in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa. J Microbial World 2014, 6(4): 290-298.
15. Lister PD, Wolter DJ, Hanson ND. Antibacterial-resistant Pseudomonas aeruginosa: clinical impact and complex regulation of chromosomally encoded resistance mechanisms. Clin Microbiol Rev. 2009; 22(4):582-610.
16. Khosravi AD, Mihani F. Detection of metallo-β-lactamase–producing Pseudomonas aeruginosa strains isolated from burn patients in Ahwaz, Iran. Diagnostic microbiology and infectious disease. 2008 Jan 1; 60(1):125-8.
17. Mohseni M, Norouzi H. Antifungal activity of actinomycetes isolated from sediments of the Caspian Sea. J Mazandaran Univ Med Sci. 2013; 23(104):80-7.
18. Xie JJ, Zhou F, Li EM, Jiang H, Du ZP, Lin R, Fang DS, Xu LY. FW523-3, a novel lipopeptide compound, induces apoptosis in cancer cells. Mol Med Rep. 2011; 4(4):759-63.
19. Songsumanus A, Kudo T, Igarashi Y, Tanasupawat S. Characterization and screening of antimicrobial activity of Micromonospora strains from Thai soils. Malays J Microbiol . 2013 Jan 1; 9(3):260-9.
20. Madhumita, T. Isolation and screening of micromonospora for bioactive metabolites and their bioevaluation. 2016.
21. Abdelmohsen UR, Pimentel-Elardo SM, Hanora A, Radwan M, Abou-El-Ela SH, Ahmed S, Hentschel U. Isolation, phylogenetic analysis and anti-infective activity screening of marine sponge-associated actinomycetes. Mar drugs. 2010; 8(3):399-412.
22. Valli S, Suvathi SS, Aysha OS, Nirmala P, Vinoth KP, Reena A. Antimicrobial potential of Actinomycetes species isolated from marine environment. Asian Pac J Trop Biomed. 2012; 2(6):469-73.
23. Sengupta, S, Pramanik, A, Ghosh, A, & Bhattacharyya, M. Antimicrobial activities of actinomycetes isolated from unexplored regions of Sundarbans mangrove ecosystem. BMC microbiol. 2015; 15(1): 170.
24. Houge-Frydrych CS, Readshaw SA, Bell DJ. SB-219383, a novel tyrosyl tRNA synthetase inhibitor from a Micromonospora sp. J Antibiot. 2000; 53(4):351-6.
25. Ertaş M, Özdemir K, Atalan E. Isolation and characterization of Micromonospora bacteria from various soil samples obtained around Lake Van. Afr J Biotechnol. 2013;12(21).
26. Hernandez LM, BLANCO JA, Baz JP, Puentes JL, Millan FR, Vazquez FE, Fernandez-Chimeno RI, Gravalos DG. 4'-N-Methyl-5'-hydroxystaurosporine and 5'-Hydroxy staurosporine, New Indolocarbazole Alkaloids from a Marine Micromonospora sp. Strain. J Antibiot. 2000; 53(9):895-902.
27. Gutierrez-Lugo MT, Woldemichael GM, Singh MP, Suarez PA, Maiese WM, Montenegro G, Timmermann BN. Isolation of three new naturally occurring compounds from the culture of Micromonospora sp. P1068. Nat Prod Res. 2005; 19(7):645-52.