دوره 22، شماره 2 - ( دو ماهنامه خرداد و تیر 1398 )                   جلد 22 شماره 2 صفحات 21-11 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


1- گروه میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی جهرم، فارس، ایران. ، elhampishgar1504@gmail.com
2- گروه بیماری‌شناسی گیاهی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
چکیده:   (2837 مشاهده)
زمینه و هدف: بسیاری از باکتری‌ها به ویژه استافیلوکوکوس اورئوس از مکانیسم حساسیت جمعیتی برای انجام بسیاری از فعالیت‌های ضروری خود مانند تولید بیوفیلم و ایجاد فاکتورهای بیماریزایی استفاده میکنند. هرگونه تداخل در این سیستم باعث ناتوانی باکتری در انجام فعالیتهای فوق خواهد شد. این مطالعه با هدف ارزیابی پتانسیل 5 عصاره گیاهی علیه حساسیت جمعیتی سویه ا. اورئوس انجام گردید.
مواد و روشها: سیزده جدایه ا. اورئوس از بیماران دچار عفونت ایمپلنت دندانی جداسازی و شناسایی شدند. گونههای گیاهی از باغات استان فارس جمع آوری و عصاره گیری به واسطه حلال اتانول 96 درصد انجام پذیرفت. اثر عصاره گیاهان به واسطه سویه نشانگر آگروباکتریوم تومی فشنس NTL/PZLR4، با آزمون ضدحساسیت جمعیتی و ‌هم‌چنین خاصیت باکتریکشی با آزمون ضدمیکروبی مورد بررسی قرار گرفت. در ضمن قدرت تولید بیوفیلم جدایهها به روش میکروتیترپلیت (MTP) ارزیابی گردید.
ملاحظات اخلاقی: این مطالعه با کد 1959-1-16-01 و 118248/73 به تأیید کمیته اخلاق معاونت پژوهشی دانشگاه آزاد اسلامی واحدهای جهرم و علوم تحقیقات تهران رسیده است.
یافتهها: نتایج نشان داد که عصاره شکوفه تمشک بهصورت معنی داری (05/0 > p) خاصیت ضد حساسیت جمعیتی دارد (> 21 میلیمتر). ایجاد هاله روشن در اطراف چاهک توسط سویه نشانگر، اثرات ضد حساسیت جمعیتی عصاره شکوفه تمشک را تایید نمود. عصاره گیاهان ترخون، گل گندم، خاکشیر و ریحان صرفاً خاصیت ضدمیکروبی از خود نشان دادند.
نتیجهگیری: با توجه به ویژگی ضد بیوفیلمی و ضد حساسیت جمعیتی عصاره شکوفه تمشک، میتوان از ترکیبات موثره موجود در این گیاه به عنوان دهانشویه جهت مقابله با عفونت ایمپلنت دندانی استفاده نمود.
متن کامل [PDF 696 kb]   (1492 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي اصیل | موضوع مقاله: علوم پایه
دریافت: 1397/9/1 | پذیرش: 1398/2/2

فهرست منابع
1. Zeighami H, Haghi F, Naderi G. Quorum Sensing in bacterial. Quarteriy of Laboratory & Diagnosis. 2015(22):9-12.
2. Mary RNI, Banu NJIJPPS. Screening of antibiofilm and anti-quorum sensing potential of Vitex trifolia in Pseudomonas aeruginosa. 2015; 7(8):242-5.
3. Makhfian M, Hassanzadeh N, Mahmoudi E, Zandyavari NJJoEOBP. Anti-quorum Sensing Effetcs of Ethanolic Crude Extract of Anethum graveolens L. 2015; 18(3):687-96.
4. Sobhanipour A, Behboudi K, Mahmoudi E. Bioassay for interference of AHL-dependent gene regulation in Pectobacterium atrosepticum and modulation of LuxI and LuxR by N-acylhomoserine lactone degrading rhizobacteria. 2017; 6(1):11-21.
5. Dhir SJJoISoP. Biofilm and dental implant: The microbial link. 2013; 17(1):5.
6. Fetzner SJJob. Quorum quenching enzymes. 2015; 201:2-14.
7. Brackman G, Coenye TJCpd. Quorum sensing inhibitors as anti-biofilm agents. 2015; 21(1):5-11.
8. Mahmoudi E. Anti-quorum sensing activity in plant extracts and its effect on the virulence of Pectobacterium carotovorum. . Biocontrol in plant protection. 2017; 5(1):59-70.
9. Soorani F. Herbs and their necessity in the development of the health system. Selected Works and Selected Articles of the 9th Pioneering Congress of Progress. 2016: 967-74.
10. Ahmed AT, Latef SA, Aziz IHJJouoAfPs. Molecular Detection of fnbA, fnbB and nuc Genes and Phenotypic Detection of some Virulence Factors in Local Staphylococcus aureus Isolates. 2017; 11(3):8-16.
11. Adonizio AL. Anti-quorum sensing agents from South Florida medicinal plants and their attenuation of Pseudomonas aeruginosa pathogenicity. 2008.
12. Rahman M, Amin K, Rahman S, Khair A, Rahman M, Hossain A, et al. Investigation of methicillin-resistant Staphylococcus aureus among clinical isolates from humans and animals by culture methods and multiplex PCR. 2018; 14(1):300.
13. Goudarzi M, Mehrabi M, Mirzaee MJsjoiuoms. A Study on the Prevalence of IS256 Insertion Sequence and Biofilm Formation in Staphylococcus Epidermidis Isolated from Healthy Human Skin. 2018; 26(1):85-93.
14. Madani SB, Amini K. Phenotypic and genotypic study of Staphylococcus aureus biofilm genes isolated from clinical and food cases using microtitrplate and Multiplex PCR. 2018.
15. Mirzaee M, Najar Peerayeh S, Ghasemian A-MJIJoP. Detection of icaABCD genes and biofilm formation in clinical isolates of methicillin resistant Staphylococcus aureus. 2014; 9(4):257-62.
16. Quave CL, Estévez-Carmona M, Compadre CM, Hobby G, Hendrickson H, Beenken KE, et al. Ellagic acid derivatives from Rubus ulmifolius inhibit Staphylococcus aureus biofilm formation and improve response to antibiotics. 2012; 7(1):e28737.
17. Quave CL, Plano LR, Pantuso T, Bennett BCJJoe. Effects of extracts from Italian medicinal plants on planktonic growth, biofilm formation and adherence of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. 2008; 118(3):418-28.

بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.