دوره 24، شماره 3 - ( مرداد و شهریور 1400 )
جلد 24 شماره 3 صفحات 359-348 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Rezaei E, Didehdar M, Mirhoseini S H. Study of Fungal Contamination Intensive Care Units of Arak Educational Hospitals and Determining Drug Sensitivity Profiles of Isolated Species. J Arak Uni Med Sci 2021; 24 (3) :348-359
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-6766-fa.html
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-6766-fa.html
رضایی عرفان، دیده دار مجتبی، میرحسینی سید حامد. بررسی آلودگی قارچی در هوای بخش‌های ویژه بیمارستان‌های آموزشی اراک و تعیین الگوی حساسیت دارویی گونه‌های جداشده. مجله دانشگاه علوم پزشكي اراك. 1400; 24 (3) :348-359
1- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، اراک، ایران.
2- گروه انگل‌شناسی و قارچ‌شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، اراک، ایران.
3- گروه مهندسی بهداشت محیط، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، اراک، ایران. ، hmirhossaini@gmail.com
2- گروه انگل‌شناسی و قارچ‌شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، اراک، ایران.
3- گروه مهندسی بهداشت محیط، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، اراک، ایران. ، hmirhossaini@gmail.com
متن کامل [PDF 5321 kb]
(955 دریافت)
| چکیده (HTML) (1544 مشاهده)
References
1.Morace G, Borghi E. Fungal infections in ICU patients: Epidemiology and the role of diagnostics. Minerva Anestesiol. 2010; 76(11):950-6. [PMID]
2.Shoham S, Marwaha S. Invasive fungal infections in the ICU. J Intensive Care Med. 2010; 25(2):78-92. [DOI:10.1177/0885066609355262] [PMID]
3.Fridkin SK, Jarvis WR. Epidemiology of nosocomial fungal infections. Clin Microbiol Rev. 1996; 9(4):499-511. [DOI:10.1128/CMR.9.4.499] [PMID]
4.McCarty TP, Pappas PG. Invasive Candidiasis. Infect Dis Clin North Am. 2016; 30(1):103-24. [DOI:10.1016/j.idc.2015.10.013] [PMID]
5.Arendrup MC, Andersen JS, Holten MK, Krarup KB, Reiter N, Schierbeck J, et al. Diagnostic performance of T2Candida among ICU patients with risk factors for invasive candidiasis. Open Forum Infect Dis. 2019; 6(5):ofz136. [DOI:10.1093/ofid/ofz136] [PMID] [PMCID]
6.Magill SS, Edwards JR, Bamberg W, Beldavs ZG, Dumyati G, Kainer MA, et al. Emerging infections program healthcare-associated infections and antimicrobial use prevalence survey team. Multistate point-prevalence survey of health care-associated infections. N Engl J Med. 2014; 370(13):1198-208. [DOI:10.1056/NEJMoa1306801] [PMID] [PMCID]
7.Pittet D, Monod M, Suter PM, Frenk E, Auckenthaler R. Candida colonization and subsequent infections in critically ill surgical patients. Ann Surg. 1994; 220(6):751-8. [DOI:10.1097/00000658-199412000-00008] [PMID] [PMCID]
8.Blumberg HM, Jarvis WR, Soucie JM, Edwards JE, Patterson JE, Pfaller MA, et al. National Epidemiology of Mycoses Survey(NEMIS) study group. Risk factors for candidal bloodstream infections in surgical intensive care unit patients: The NEMIS prospective multicenter study. The national epidemiology of mycosis survey. Clin Infect Dis. 2001; 33(2):177-86. [DOI:10.1086/321811] [PMID]
9.Neofytos D, Horn D, Anaissie E, Steinbach W, Olyaei A, Fishman J, et al. Epidemiology and outcome of invasive fungal infection in adult hematopoietic stem cell transplant recipients: Analysis of multicenter Prospective Antifungal Therapy (PATH) Alliance registry. Clin Infect Dis. 2009; 48(3):265-73. [DOI:10.1086/595846] [PMID]
10.Darling BA, Milder EA. Invasive aspergillosis. Pediatr Rev. 2018; 39(9):476-8. [DOI:10.1542/pir.2017-0129] [PMID]
11.Cadena J, Thompson GR 3rd, Patterson TF. Invasive aspergillosis: Current strategies for diagnosis and management. Infect Dis Clin North Am. 2016; 30(1):125-42. [DOI:10.1016/j.idc.2015.10.015] [PMID]
12.Patterson TF, Kirkpatrick WR, White M, Hiemenz JW, Wingard JR, Dupont B, et al. Invasive aspergillosis. Disease spectrum, treatment practices, and outcomes. I3 aspergillus study group. Medicine (Baltimore). 2000; 79(4):250-60. [DOI:10.1097/00005792-200007000-00006] [PMID]
13.Skiada A, Lass-Floerl C, Klimko N, Ibrahim A, Roilides E, Petrikkos G. Challenges in the diagnosis and treatment of mucormycosis. Med Mycol. 2018; 56(S 1):93-101. [DOI:10.1093/mmy/myx101] [PMID] [PMCID]
14.Nucci M, Marr KA, Vehreschild M , de Souza CA, Velasco E, Cappellano P, et al. Improvement in the outcome of invasive fusariosis in the last decade. Clin Microbiol Infect. 2014; 20(6):580-5. [DOI:10.1111/1469-0691.12409] [PMID]
15.Nucci M, Anaissie E. Fusarium infections in immunocompromised patients. Clin Microbiol Rev. 2007; 20(4):695-704. [DOI:10.1128/CMR.00014-07] [PMID] [PMCID]
16.Nucci M, Anaissie EJ, Queiroz-Telles F, Martins CA, Trabasso P, Solza C, et al. Outcome predictors of 84 patients with hematologic malignancies and Fusarium infection. Cancer. 2003; 98(2):315-9. [DOI:10.1002/cncr.11510] [PMID]
17.Mirhoseini S H, Ariyan F, Mohammadi S. [Quantitative and qualitative monitoring of airborne bacteria and fungi and their relationship with environmental parameters in two selected primary schools (Persian)]. J Arak Univ Med Sci. 2020; 22(6):242-51. [DOI:10.32598/JAMS.22.6.5931.1]
18.John HR. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of filamentous fungi, approved standard. M38-A2. Clin Lab Stand Inst. 2008; 28(16):1-35. https://ci.nii.ac.jp/naid/20001565008/
19.Nasrolahiomran A. [Evatuation of drug susceptibility of aspergillus species isolated from ICU of hospitals in invitro (Persian)]. Sci J ilam Univ Med Sci. 2018; 25(6):130-40. [DOI:10.29252/sjimu.25.6.130]
20.Mosayebi M, Eslamirad Z, Hajihossein R, Ghorbanzadeh B, Shahverdi M, Didehdar M. Evaluating of fungal contamination in hospital wet cooling systems in Markazi province, Central Iran. J Mycol Med. 2017; 27(3):334-8. [DOI:10.1016/j.mycmed.2017.04.003] [PMID]
21.Basiri H, Godini H, Omidi Khaniabadi Y, Sepahvand A. [Study of indoor and ambient air fungual bioaerosols and its relation with particulate matters in a hospital of Khorramabad (Persian)]. Yafte. 2016; 17(4):25-34. http://eprints.lums.ac.ir/54/
22.Hojatinia H, Sabokbar A. Sensitivity determination of Aspergilus Flavus to Itraconazol, Voriconazol and Caspofungin. N Cell Mol Biotechnol J. 2016; 6(22):51-8. http://ncmbjpiau.ir/article-1-810-en.html
23.Denning DW, Ribaud P, Milpied N, Caillot D, Herbrecht R, Thiel E, et al. Efficacy and safety of voriconazole in the treatment of acute invasive aspergillosis. Clin Infect Dis. 2002; 34(5):563-71. [DOI:10.1086/324620] [PMID]
24.Araujo R, Coutinho I, Espinel-Ingroff A. Rapid method for testing the susceptibility of Aspergillus fumigatus to amphotericin B, itraconazole, voriconazole and posaconazole by assessment of oxygen consumption. J Antimicrob Chemother. 2008; 62(6):1277-80. [DOI:10.1093/jac/dkn415] [PMID]
25.Shi JY, Xu YC, Shi Y, Lü HX, Liu Y, Zhao WS, et al. In vitro susceptibility testing of Aspergillus spp. against voriconazole, itraconazole, posaconazole, amphotericin B and caspofungin. Chin Med J. 2010; 123(19):2706-9. [PMID]
26.Dudakova A, Spiess B, Tangwattanachuleeporn M, Sasse C, Buchheidt D, Weig M, et al. Molecular tools for the detection and deduction of azole antifungal drug resistance phenotypes in aspergillus species. Clin Microbiol Rev. 2017; 30(4):1065-91. [DOI:10.1128/CMR.00095-16] [PMID] [PMCID]
27.Pilmis B, Alanio A, Lortholary O, Lanternier F. Recent advances in the understanding and management of mucormycosis. F1000Res. 2018; 7:F1000 Faculty Rev-1429. [DOI:10.12688/f1000research.15081.1] [PMID] [PMCID]
28.McCarthy MW, Katragkou A, Iosifidis E, Roilides E, Walsh TJ. Recent advances in the treatment of scedosporiosis and fusariosis. J Fungi (Basel). 2018; 4(2):73. [DOI:10.3390/jof4020073] [PMID] [PMCID]
29.Arnoni MV, Paula CR, Auler ME, Simões CCN, Nakano S, Szeszs MW, et al. Infections caused by fusarium species in pediatric cancer patients and review of published literature. Mycopathologia. 2018; 183(6):941-9. [DOI:10.1007/s11046-018-0257-6] [PMID]
متن کامل: (1744 مشاهده)
مقدمه
عفونت‌های قارچی مهاجم یکی از مسائل نگران‌کننده در بخش‌های پرخطر بیمارستانی هستند. قارچ‌های فرصت‌طلبی این عفونت‌ها را در اکثر موارد در بیماران دچار نقص ایمنی و سایر نقص‌های سلامتی به وجود می‌آورند که در اغلب موارد در بیماران با ایمنی سالم باعث بروز عفونت به‌ویژه عفونت‌های مهاجم نمی‌شوند [1].
اسپورهای قارچی نیز از جمله بیوآئروسل‌ها بوده که در همه‌جا یافت شده و انتشار وسیع آن‌ها می‌تواند باعث ایجاد شکل‌های مختلف بیماری به‌ویژه در افراد دچار ضعف سیستم ایمنی و بستری در بیمارستان شود.
قارچ‌ها قدرت تطابق بالایی نسبت به شرایط گوناگون زیست‌محیطی دارند. با این حال آلودگی قارچی در محیط‌های داخلی به عوامل متعددی از جمله رطوبت، تهویه، درجه حرارت، وجود ماده آلی در مصالح ساختمانی، بار قارچی در فضای خارجی ساختمان و فعالیت‌های ساخت‌وساز بستگی دارد [2]. بنابراین قارچ‌های رشته‌ای موجود در اتاق‌های بیمارستانی ممکن است در محیط و بر سطوح گوناگون رشد کرده و میکروکلنی‌هایی را ایجاد کنند که اگر افراد دارای بیماری‌های زمینه‌ای و نقص سیستم ایمنی بستری در بیمارستان‌ها آن‌ها را استنشاق کنند، اسپور ناشی از این کلنی‌ها می‌تواند موجب طیف متنوعی از عفونت‌های بیمارستانی سطحی تا منتشره شود.
گونه‌های مخمر کاندیدا، گونه‌های آسپرژیلوس، زایگومیست‌ها شامل موکور و رایزوپوس قارچ‌های مهمی هستند که موجب عفونت‌های قارچی مهاجم می‌شوند؛ در درجه بعدی اهمیت می‌توان فوزاریوم‌ها را نیز به این فهرست افزود [2].
گونه‌های کاندیدا شایع‌ترین عوامل عفونت‌های قارچی انسان (به‌طور عام) و عفونت‌های قارچی مهاجم انسان (به‌طور خاص) هستند. شایع‌ترین گونه بیماری‌زا کاندیدا آلبیکنس نام دارد و سایر گونه‌ها زیر دسته‌بندی کاندیداهای غیرآلبیکنس جای می‌گیرند. مهم‌ترین گونه‌های کاندیدا که موجب عفونت مهاجم می‌شوند، C.albicans ،C.glabrata ،C.parapsilosis ،C.tropicalis و C.krusei هستند [3]. اگرچه کاندیدا آلبیکنس شایع‌ترین گونه جداشده در موارد مهاجم است، بیش از نیمی از موارد مهاجم به واسطه کاندیداهای غیرآلبیکنس ایجاد می‌شود [4]. کاندیدیاز مهاجم به دو دسته کاندیدمی به معنای درگیری جریان خون و کاندیدیاز با درگیری ارگان‌های عمقی تقسیم می‌شود که می‌تواند ارگان‌های گوناگونی را درگیر کند [5]. چهارمین علت شایع عفونت جریان خون کاندیدمی است [6]. برجسته‌ترین عامل خطر بروز کاندیدمی، نارس بودن نوزاد و وزن کم در هنگام تولد است که در بخش NICU مشاهده می‌شود. این نوزادان در معرض خطر بسیار زیاد بروز عفونت منتشر کاندیدایی قرار دارند. تعبیه کاتترهای ورید مرکزی، مواجهه با عوامل آنتی‌باکتریال وسیع الطیف، بستری بیش از 3 روز در ICU، جراحی بزرگ اخیر، پانکراتیت نکروزان، همودیالیز و سرکوب ایمنی از شایع‌ترین عوامل خطر بروز کاندیدمی محسوب می‌شوند [4، 7، 8].
گونه‌های متفاوت کاندیدا الگوی درگیری، بیماری‌زایی و الگوی مقاومت دارویی متفاوتی دارند [4]. بنابراین افتراق گونه‌های آن ارزش درمانی دارد.
آسپرژیلوس مهاجم شایع‌ترین عفونت قارچی در بیمارانی است که عمل پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز داشته‌اند [9]. آسپرژیلوس مهاجم معمولاً در بیمارانی بروز می‌کند که در شرایط نوتروپنی قرار دارند مثل افرادی که شیمی درمانی می‌کنند و یا اینکه عملکرد ماکروفاژهای آن‌ها مختل شده است [11 ،10]. شایع‌ترین عامل قارچی آسپرژیلوز فومیگاتوس است و در رده‌های بعدی فلاووس، تروس و نایجر قرار می‌گیرند [12].
یکی از جمعیت‌های در معرض خطر برای آسپرژیلوس مهاجم بیمارانی هستند که پیوند اعضا انجام می‌دهند. بیمارانی که پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز دارند در معرض بیشترین خطر برای آسپرژیلوس مهاجم به‌ویژه بیماری ریوی و سینوسی هستند [12].
آسپرژیلوس ریوی مهاجم، آسپرژیلوس تراکئوبرونکیال، سینوزیت آسپرژیلوسی، درگیری چشمی، استئومیلیت و درگیری سیستم اعصاب مرکزی انواع تظاهرات آسپرژیلوز مهاجم را شامل می‌شوند. داروهای تری‌آزول‌ها، اکینوکاندین‌ها و آمفوتریسین B برای درمان آسپرژیلوز مهاجم به کار می‌روند [11].
در سالیان اخیر مقاومت گونه‌های آسپرژیلوس به آزول‌ها افزایش داشته است. یکی از علل مهم این افزایش استفاده از آفت‌کش‌ها و مواد ضد قارچ در کشاورزی است. در صورت مواجهه با گونه‌های آسپرژیلوس مقاوم، استفاده از آمفوتریسین ب یا درمان ترکیبی تری آزول + اکینوکاندین و نیز انجام آزمون حساسیت دارویی به عوامل ضدقارچ توصیه می‌شود [11].
موکورمایکوزیس (زایگومایکوزیس) توسط گونه‌های رده Mucorales از جمله رایزوپوس (شایع‌ترین) و موکور ایجاد می‌شود. این عفونت در کشورهای در حال توسعه شیوع بیشتری دارد و بیشتر مبتلایان به نقص ایمنی و بدخیمی‌های خونی را درگیر می‌کند. این عفونت تمایل دارد به سرعت سیستمیک شود و در بدن منتشر شود، درنتیجه مرگ‌و‌میر زیادی را سبب می‌شود [13].
فوزاریوزیس مهاجم نیز یکی از مهم‌ترین عفونت‌های قارچی است که تقریباً تنها در بیماران نقص ایمنی بروز می‌کند. این عفونت معمولاً به شکل منتشر در می‌آید و اغلب بیماران نوتروپنیک مبتلا به لوکمی حاد یا مبتلایان به نقایص سلول T را درگیر می‌کند؛ به‌ویژه بیمارانی که پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز دریافت کرده‌اند و به دلیل بروز واکنش پیوند بر علیه بدن داروهای کورتیکوستروئید دریافت می‌کنند، را درگیر می‌کند [14, 15, 16].
درمان عفونت‌های فوزاریوزیس مهاجم با محدودیت‌هایی همراه است، زیرا که به تری‌آزول‌های جدید رایج در درمان عفونت‌های قارچی سیستمیک مثل وریکونازول و پساکونازول مقاومت نسبی پیدا کرده است [15]. گونه‌های فوزاریومی نسبت به داروهای ضدقارچی مقاومت بیشتری از سایر قارچ‌های مهاجم دارند.
در سالیان اخیر مقاومت دارویی قارچ‌های بیماری‌زا به صورت مشکل جدی‌تری برای نظام سلامت درآمده است. به علاوه الگوی حساسیت دارویی عوامل بیماری‌زا در مناطق متفاوت جغرافیایی تفاوت‌هایی با دستورالعمل‌های بین‌المللی دارد. به طوری که در بعضی موارد دستورالعمل‌های درمانی بین‌المللی برای درمان عفونت کافی نیستند. بنابراین تعیین منطقه‌ای الگوی حساسیت دارویی عفونت‌ها برای هر منطقه ارزشمند است. مطالعه حاضر به بررسی فراوانی قارچ‌های فرصت‌طلب، به‌ویژه کاندیدا، آسپرژیلوس، زایگومیست‌ها و فوزاریوم‌ها در هوا و سطوح بخش‌های ویژه بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک و تعیین حساسیت دارویی گونه‌های جداشده نسبت به آزول‌ها، آمفوتریسین B و کاسپوفانژین می‌پردازد.
مواد و روش‌ها
این مطالعه توصیفی مقطعی به مدت یک سال در بخش‌های ویژه و پرخطر بیمارستان‌های آموزشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک انجام شد. نمونه‌برداری از هوا و سطوح مربوط به هفت بخش پرخطر و ویژه بیمارستان حضرت ولی‌عصر (عج) (بخش‌های مراقبت ویژه اعصاب، مراقبت ویژه جراحی اعصاب، مراقبت ویژه جراحی، سوختگی، عفونی، ایزوله تنفسی و اتاق عمل)، پنج بخش بیمارستان امیرالمؤمنین (ع) (بخش‌های مراقبت ویژه داخلی، مراقبت ویژه جراحی، مراقبت‌های ویژه قلب باز، قلب و ریه و داخلی B مربوط به بیماران کلیوی و خودایمنی و دیابتی)، دو بخش بیمارستان آیت الله خوانساری (ره) (بخش‌های مراقبت‌های ویژه هماتولوژی و خون)، 6 بخش بیمارستان امیر کبیر (بخش‌های عفونی اطفال، مراقبت‌های ویژه اطفال، نوزادان، مراقبت‌های ویژه نوزادان، بخش خون و سرطان اطفال) و دو بخش بیمارستان آیت الله طالقانی (بخش‌های نوزادان و مراقبت ویژه نوزادان) انجام شد.
نمونه‌برداری از هوا و سطوح بیمارستانی
درمجموع 63 نمونه از هوا و 63 نمونه از سطوح با تکرار (duplicate) برداشت شد. نمونه‌برداری از هوا به روش فعال با استفاده از نمونه‌بردار تک‌مرحله‌ای اندرسن ساخت شرکت SKC انگلستان (روش استاندارد NIOSH) در دبی 28/3 و زمان 5 دقیقه روی محیط کشت سابرودکستروز آگار (ساخت شرکت مرک آلمان) حاوی کلرامفنیکل انجام شد [17]. دستگاه نمونه‌برداری در ارتفاع تنفسی افراد (حدود 1/5 متر از سطح زمین) و با حفظ فاصله یک متر از دیوار و موانع قرار داده شد. قبل از هر بار نمونه‌برداری و قرار دادن پلیت حاوی محیط کشت، عمل استریل کردن دستگاه نمونه‌برداری با استفاده از هیپوکلریت سدیم انجام شد. هم‌زمان با نمونه‌برداری هوا، عمل نمونه‌برداری از سطوح هر بخش نیز با استفاده از یک سواپ مرطوب استریل به‌طور تصادفی از سطوح متفاوت هر بخش برداشت شده و به صورت خطی روی محیط کشت سابرودکستروزآگار حاوی کلرامفنیکل کشت داده شد. بعد از نمونه‌برداری، نمونه‌ها با رعایت زنجیره سرد به آزمایشگاه منتقل شد. نمونه‌ها به مدت 7 تا 10 روز در دمای 28 درجه نگهداری شده و روزانه از نظر تشکیل کلنی پایش شدند. شناسایی اولیه کلنی قارچ‌ها با استفاده از ویژگی‌های ظاهری و میکروسکوپی آن‌ها صورت گرفت.
تست حساسیت دارویی
نمونه‌های مطالعه‌شده نسبت به داروهای ضدقارچی مطابق با روش استاندارد CLSI- M38A2 انجام شد. برای بررسی و ارزیابی MIC در سه سری دوتایی میکروپلیت 96خانه‌ای برای گونه‌های قارچی مهم جداشده (از هوا و سطوح بخش‌های ویژه بیمارستان‌های شهر اراک) استفاده و مطابق با روش Microdilution Broth تست حساسیت دارویی انجام شد [18].
از کشت‌های هریک از کلنی‌های ایزوله‌شده در لوله‌های حاوی محیط کشت پتیتو دکستروز آگار (مرک، آلمان) با اضافه کردن یک میلی‌لیتر آب مقطر استریل و یک قطره توئین 20، سوسپانسیون اولیه اسپور یا کونیدی تهیه و سپس به مدت 15 ثانیه سوسپانسیون تهیه‌شده را خوب مخلوط (ورتکس) کرده و اسپورها و کونیدی‌های سوسپانسیون فوق را با روش چشمی در رقت‌های متوالی مناسب با آب مقطر به رقتی معادل با نیم مک فارلند (105×2-5) رساندیم [18].
طبق راهنمای CLSI داروها، برای تهیه محلول‌های استوک 1600 میکروگرم بر میلی‌لیتر از داروهای وریکونازول (سیگما، آلمان)، آمفوتریسین ب (های مدیا، هند)، ایتراکونازول (سیگما، آلمان) و کاسپوفانژین (سیگما، آلمان) استفاده شد، 0/08 گرم پودرهای داروهای فوق را جداگانه با 50 میلی‌لیتر DMSO (سیگما، آلمان) حل و در دمای اتاق به مدت 30 دقیقه نگهداری کردیم تا حل شوند. برای انجام تست میکرودایلوشن، رقت‌های 0/0313 تا 16 میکروگرم بر میلی‌لیتر از ایتراکونازول (ITR)، رقت‌های 8-0/8 میکروگرم بر میلی‌لیتر از کاسپوفانژین (CAP)، رقت‌های 1- 0/025 میکروگرم بر میلی‌لیتر از وریکونازول (VRC)، رقت‌های 2 الی 0/5 میکروگرم بر میلی‌لیتر آمفوتریسین ب (AmB) تهیه شد. برای تهیه رقت‌های 8-0/025 میکروگرم بر میلی‌لیتر از کتوکونازول (Ket) 2 میکروگرم پودر (سیگما، آلمان) این دارو را در 1 میلی‌لیتر متانول حل و در دمای اتاق به مدت 30 دقیقه نگهداری کردیم تا کاملاً حل شود [18].
طبق پروتکل تست Microdillution Broth، رقت‌های سریال برای هر داروی مورد بررسی در رقت‌های ذکرشده در میکروپلیت‌های مسطح 96 خانه‌ای به مقدار µl 100 برای هر چاهک تهیه شد، به طوری که چاهک اول حاوی بیشترین غلظت و چاهک دو تا مانده به آخر حاوی کمترین غلظت دارو بود. در چاهک‌های اول تا چاهک‌های دو تا مانده به آخر مقدار 100 میکرولیتر محیط RPMI (سیگما، آلمان) اضافه شد، در ادامه 100 میکرولیتر از سوسپانسیون تلقیحی نهایی به هر چاهک اضافه شد. بدین‌ترتیب این دو 1:1 رقیق شده و به غلظت نهایی رسیدند. چاهک یکی مانده به آخر حاوی 200 میکرولیتر محیط RPMI و فاقد دارو و ارگانیسم به عنوان کنترل منفی و چاهک آخر حاوی 100 میکرولیتر محیط RPMI بدون دارو و 100 میکرولیتر از سوسپانسیون تلقیحی و کنترل مثبت برای مقایسه رشد با سایر چاهک‌ها در نظر گرفته شد. در ادامه میکروپلیت‌ها در دمای 35 درجه سانتی‌گراد، به مدت 48 ساعت انکوبه و نمونه‌ها در سه سری دوتایی کار شدند. طبق دستورالعمل برای خواندن نتایج MIC به صورت چشمی به کمک یک آینه با بزرگ‌نمایی و مقایسه رشد قارچ در هر رقت و چاهک با حفره کنترل مثبت که رشد 100 درصد دارد، انجام گرفت. در این روش MIC یعنی پایین‌ترین غلظت دارویی بعد از 48 ساعت انکوباسیون هیچ رشد قارچ مشاهده نمیشود.
یافته‌ها
در جدول شماره 1 گونه‌های قارچی جداشده هوا و سطوح بخش‌های ویژه و پرخطر بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک نشان داده شده است.
.jpg)
جدول شماره 2 گونه‌های قارچی بیماری‌زای جداشده از نمونه‌های هوا و سطوح مربوط به بخش‌های گوناگون بررسی‌شده را نشان می‌دهد.
.jpg)
نتایج حاصل از ارزیابی گونه‌های بیماری‌زای جداشده نسبت به داروهای ضدقارچی کتوکونازول، ایتراکونازول، وریکونازول، آمفوتریسین ب و کاسپوفانژین در جداول شماره 3 و 4 آورده شده است.
.jpg)
جدول شماره 3 کمترین غلظت مهارکننده (MIC) داروی ضدقارچی را درباره هریک از گونه‌های جداشده نشان می‌دهد. جدول شماره 4 نیز گونه‌های بیماری‌زا را از نظر حساس یا مقاوم بودن به هریک از داروهای مورد بررسی دسته‌بندی می‌کند.
.jpg)
بحث
قارچ‌های فرصت‌طلب بیمارستانی شامل مخمر کاندیدا، گونه‌های آسپرژیلوس، زایگومیست (شامل موکور و رایزوپوس) و فوزاریوم است که در بیماران پرخطر می‌توانند موجب بروز عفونت‌های مهاجم و به سرعت پیش‌رونده شوند. در نتیجه نیازمند ظن تشخیصی به‌موقع و درمان سریع هستند. درمان این قارچ‌ها معمولاً در بیماران دارای ایمنی سالم موجب بروز عفونت، به‌ویژه عفونت‌های مهاجم نمیشود [2, 1].
در مطالعه حاضر ارگانیسم‌های بیماری‌زایی که از 102 نمونه بخش‌های پرخطر بیمارستان‌های آموزشی اراک جدا شدند شامل این موارد بودند: آسپرژیلوس نایجر هشت مورد، آسپرژیلوس فلاووس چهار مورد، آسپرژیلوس فومیگاتوس دو مورد، موکور یک مورد، رایزوپوس دو مورد، فوزاریوم یک مورد. نکته جالب توجه آنکه هیچ گونه‌ای از مخمر کاندیدا در این مطالعه جدا نشد. با توجه به این که کاندیدا از جمله قارچ‌های فلور نرمال بدن بیماران به شمار می‌رود [4]، می‌توان علت احتمالی بروز نتیجه منفی برای کاندیدا را رعایت مناسب نکات بهداشتی توسط کادر درمانی بخش‌ها دانست.
در مطالعه‌ای که نصراللهی عمران در شهر تنکابن با تمرکز بر گونه‌های آسپرژیلوس موجود در ICUها انجام داد، از کل 160 نمونه آسپرژیلوس جداشده، پنج مورد آسپرژیلوس فلاووس، سه مورد آسپرژیلوس سیدوئی، دو مورد آسپرژیلوس اوریزه آ و یک مورد آسپرژیلوس فومیگاتوس بودند [19]. در مقایسه با مطالعه حاضر، اگرچه ایزوله‌های جداشده تا حدی متفاوت هستند ولی از نظر شیوع بیشتر آسپرژیلوس فلاووس نسبت به آسپرژیلوس فومیگاتوس در محیط‌های بیمارستانی بین دو مطالعه همخوانی وجود دارد.
همچنین در مطالعه‌ای که مسیبی و همکاران روی نمونه آب سیستم‌های سرمایشی مرطوب در بیمارستان‌های اراک انجام دادند، شش مورد آسپرژیلوس فومیگاتوس، شش مورد آسپرژیلوس فلاووس، شش مورد کاندیدا آلبیکنس، سه مورد گونه‌های موکور، دو مورد آسپرژیلوس نایجر، دو مورد گونه‌های رایزوپوس، یک مورد فوزاریوم و یک مورد کاندیدا پاراپسیلوزیس جدا کردند. در این مطالعه جایگاه گونه‌های آسپرژیلوس به عنوان شایع‌ترین ارگانیسم قارچی جداشده از نمونه‌های بیمارستانی تأکید شد که با مطالعه حاضر مشابهت دارد [20].
در مطالعه‌ای که بصیری و همکاران در بیمارستان عشایر شهر خرم‌آباد استان لرستان انجام دادند، بخش عفونی بیمارستان آلوده‌ترین بخش و اتاق عمل پاکیزه‌ترین بخش از نظر آلودگی قارچی بود [21]. در مطالعه حاضر پاکیزه‌ترین بخش‌ها شامل بخش‌های نوزادان بیمارستان امیرکبیر و ICU جراحی و ICU مغز و اعصاب بیمارستان ولی‌عصر (عج)، بدون ارگانیسم بیماری‌زا و آلوده‌ترین بخش، بخش سوختگی بیمارستان ولی‌عصر (عج) با دو ارگانیسم بیماری‌زا بود. در مطالعه فوق شایع‌ترین قارچ جداشده از نمونه‌ها گونه‌های کلادوسپوریوم بود که با نتایج مطالعه حاضر مطابقت دارد.
در پژوهش حاضر مقاومت دارویی به داروهای در دسترس مثل کتوکونازول، ایتراکونازول، وریکونازول، کاسپوفانژین و آمفوتریسین B بررسی شد. نکته‌ای که در ابتدا شایان تذکر است اینکه بررسی مقاومت دارویی کاندیداها در این مطالعه مقدور نشد، زیرا در میان ایزوله‌ها گونه‌های کاندیدا جدا نشدند. ایزوله‌های جداشده شامل گونه‌های آسپرژیلوس (نایجر، فلاووس و فومیگاتوس)، رایزوپوس، موکور و فوزاریوم بودند. در این بررسی گونه‌های آسپرژیلوس فلاووس، موکور، رایزوپوس و فوزاریوم نسبت به همه داروهای بررسی‌شده حساس بودند. آسپرژیلوس فومیگاتوس در یک مورد نسبت به ایتراکونازول نیمه‌حساس بود و آسپرژیلوس نایجر در یک مورد نسبت به کتوکونازول نیمه‌حساس و نسبت به ایتراکونازول مقاوم بود که توجه‌برانگیز است.
در پژوهش نصراللهی عمران به مقایسه حساسیت دارویی گونه‌های آسپرژیلوس جداشده، پرداخته شده است و مشابه با مطالعه ما، آسپرژیلوس فلاووس به همه پنج داروی بررسی‌شده حساس بوده است. آسپرژیلوس فومیگاتوس و آسپرژیلوس سیدوئی به آمفوتریسین ب و وریکونازول حساس و به ایتراکونازول مقاوم بودند. آسپرژیلوس سیدوئی ببهکاسپوفانژین نیز مقاوم بود در حالی که آسپرژیلوس فومیگاتوس به این دارو نیز حساس بود [19]. نمای عمومی نتایج مقاومت دارویی گونه‌های آسپرژیلوس حاصل از این پژوهش با نتایج مطالعه حجتی‌نیا و همکاران [22]، دنینگ و همکاران [23]، آراجو و همکاران [24]، شی [25] و تانگ و همکاران [26] مشابهت داشت؛ بنابراین می‌توان از داروهای وریکونازول و کاسپوفانژین به‌عنوان مؤثرترین داروهای خط اول درمان آسپرژیلوز مهاجم نام برد.
در دستورالعمل‌های درمان دارویی موکورمایکوزیس، اشکال لیپیدی آمفوتریسین B به عنوان درمان خط اول مطرح هستند و پساکونازول به‌عنوان درمان دارویی جایگزین استفاده می‌شود. این دستورالعمل در مطالعه مروری اخیر پیلمیس و همکاران نیز تأکید شده است [27]. این دستورالعمل با یافته‌های مطالعه حاضر مبنی بر اینکه مقاومتی نسبت به آمفوتریسین B در ایزوله‌های موکور و رایزوپوس دیده نشد، همخوانی دارد.
مطالعات گذشته نشان داده‌اند که رژیم دارویی مناسب برای فوزاریوزیس مهاجم آزول جدید مثل وریکونازول به همراه آمفوتریسین ب است. البته این الگو در مورد گونه فوزاریوم سولانی که مهم‌ترین گونه بیماری‌زای فوزاریوم نیز هست به صورت مقاومت بیشتر نسبت به وریکونازول و حساسیت بیشتر به آمفوتریسین ب است [28، 29]. در مطالعه حاضر تنها فوزاریوم جداشده به هر دو داروی اشاره‌شده حساس بود.
نتیجه‌گیری
در این مطالعه قارچ‌های موجود در هوا و سطوح بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک تعیین شدند و الگوی حساسیت دارویی گونه‌های مهاجم تعیین شد. طبق این بررسی، داروهای جدید اشاره‌شده در دستورالعمل‌ها شامل وریکونازول و کاسپوفانژین (داروهای اصلی درمان آسپرژیلوز مهاجم) و نیز داروی آمفوتریسین ب (داروی اصلی درمان موکورمایکوز و فوزاریوز مهاجم) بر تمام ایزوله‌های جداشده در بررسی حاضر مؤثر هستند.
ملاحظات اخلاقی
پیروی از اصول اخلاق پژوهش
این مطالعه در کمیته اخلاق شورای پژوهشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، به تصویب رسیده است (کد اخلاق: IR.ARAKMU.REC.1395.315).
حامی مالی
این مطالعه از طرح تحقیقاتی تأیید شده توسط دانشگاه علوم پزشکی اراک استخراج شده است (کد: 2679).
مشارکت نویسندگان
تمامی نویسندگان در نوشتن این مقاله به یک اندازه مشارکت داشتند.
تعارض منافع
نویسندگان تصریح می‌کنند که تضاد منافعی برای پژوهش حاضر وجود ندارد.
تشکر و قدردانی
بدین‌وسیله از حمایت‌های معاونت پژوهشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک و پرسنل محترم بخش‌های گوناگون بیمارستان‌های آموزشی زیر نظر دانشگاه علوم‌پزشکی اراک تقدیر و تشکر می‌شود.
عفونت‌های قارچی مهاجم یکی از مسائل نگران‌کننده در بخش‌های پرخطر بیمارستانی هستند. قارچ‌های فرصت‌طلبی این عفونت‌ها را در اکثر موارد در بیماران دچار نقص ایمنی و سایر نقص‌های سلامتی به وجود می‌آورند که در اغلب موارد در بیماران با ایمنی سالم باعث بروز عفونت به‌ویژه عفونت‌های مهاجم نمی‌شوند [1].
اسپورهای قارچی نیز از جمله بیوآئروسل‌ها بوده که در همه‌جا یافت شده و انتشار وسیع آن‌ها می‌تواند باعث ایجاد شکل‌های مختلف بیماری به‌ویژه در افراد دچار ضعف سیستم ایمنی و بستری در بیمارستان شود.
قارچ‌ها قدرت تطابق بالایی نسبت به شرایط گوناگون زیست‌محیطی دارند. با این حال آلودگی قارچی در محیط‌های داخلی به عوامل متعددی از جمله رطوبت، تهویه، درجه حرارت، وجود ماده آلی در مصالح ساختمانی، بار قارچی در فضای خارجی ساختمان و فعالیت‌های ساخت‌وساز بستگی دارد [2]. بنابراین قارچ‌های رشته‌ای موجود در اتاق‌های بیمارستانی ممکن است در محیط و بر سطوح گوناگون رشد کرده و میکروکلنی‌هایی را ایجاد کنند که اگر افراد دارای بیماری‌های زمینه‌ای و نقص سیستم ایمنی بستری در بیمارستان‌ها آن‌ها را استنشاق کنند، اسپور ناشی از این کلنی‌ها می‌تواند موجب طیف متنوعی از عفونت‌های بیمارستانی سطحی تا منتشره شود.
گونه‌های مخمر کاندیدا، گونه‌های آسپرژیلوس، زایگومیست‌ها شامل موکور و رایزوپوس قارچ‌های مهمی هستند که موجب عفونت‌های قارچی مهاجم می‌شوند؛ در درجه بعدی اهمیت می‌توان فوزاریوم‌ها را نیز به این فهرست افزود [2].
گونه‌های کاندیدا شایع‌ترین عوامل عفونت‌های قارچی انسان (به‌طور عام) و عفونت‌های قارچی مهاجم انسان (به‌طور خاص) هستند. شایع‌ترین گونه بیماری‌زا کاندیدا آلبیکنس نام دارد و سایر گونه‌ها زیر دسته‌بندی کاندیداهای غیرآلبیکنس جای می‌گیرند. مهم‌ترین گونه‌های کاندیدا که موجب عفونت مهاجم می‌شوند، C.albicans ،C.glabrata ،C.parapsilosis ،C.tropicalis و C.krusei هستند [3]. اگرچه کاندیدا آلبیکنس شایع‌ترین گونه جداشده در موارد مهاجم است، بیش از نیمی از موارد مهاجم به واسطه کاندیداهای غیرآلبیکنس ایجاد می‌شود [4]. کاندیدیاز مهاجم به دو دسته کاندیدمی به معنای درگیری جریان خون و کاندیدیاز با درگیری ارگان‌های عمقی تقسیم می‌شود که می‌تواند ارگان‌های گوناگونی را درگیر کند [5]. چهارمین علت شایع عفونت جریان خون کاندیدمی است [6]. برجسته‌ترین عامل خطر بروز کاندیدمی، نارس بودن نوزاد و وزن کم در هنگام تولد است که در بخش NICU مشاهده می‌شود. این نوزادان در معرض خطر بسیار زیاد بروز عفونت منتشر کاندیدایی قرار دارند. تعبیه کاتترهای ورید مرکزی، مواجهه با عوامل آنتی‌باکتریال وسیع الطیف، بستری بیش از 3 روز در ICU، جراحی بزرگ اخیر، پانکراتیت نکروزان، همودیالیز و سرکوب ایمنی از شایع‌ترین عوامل خطر بروز کاندیدمی محسوب می‌شوند [4، 7، 8].
گونه‌های متفاوت کاندیدا الگوی درگیری، بیماری‌زایی و الگوی مقاومت دارویی متفاوتی دارند [4]. بنابراین افتراق گونه‌های آن ارزش درمانی دارد.
آسپرژیلوس مهاجم شایع‌ترین عفونت قارچی در بیمارانی است که عمل پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز داشته‌اند [9]. آسپرژیلوس مهاجم معمولاً در بیمارانی بروز می‌کند که در شرایط نوتروپنی قرار دارند مثل افرادی که شیمی درمانی می‌کنند و یا اینکه عملکرد ماکروفاژهای آن‌ها مختل شده است [11 ،10]. شایع‌ترین عامل قارچی آسپرژیلوز فومیگاتوس است و در رده‌های بعدی فلاووس، تروس و نایجر قرار می‌گیرند [12].
یکی از جمعیت‌های در معرض خطر برای آسپرژیلوس مهاجم بیمارانی هستند که پیوند اعضا انجام می‌دهند. بیمارانی که پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز دارند در معرض بیشترین خطر برای آسپرژیلوس مهاجم به‌ویژه بیماری ریوی و سینوسی هستند [12].
آسپرژیلوس ریوی مهاجم، آسپرژیلوس تراکئوبرونکیال، سینوزیت آسپرژیلوسی، درگیری چشمی، استئومیلیت و درگیری سیستم اعصاب مرکزی انواع تظاهرات آسپرژیلوز مهاجم را شامل می‌شوند. داروهای تری‌آزول‌ها، اکینوکاندین‌ها و آمفوتریسین B برای درمان آسپرژیلوز مهاجم به کار می‌روند [11].
در سالیان اخیر مقاومت گونه‌های آسپرژیلوس به آزول‌ها افزایش داشته است. یکی از علل مهم این افزایش استفاده از آفت‌کش‌ها و مواد ضد قارچ در کشاورزی است. در صورت مواجهه با گونه‌های آسپرژیلوس مقاوم، استفاده از آمفوتریسین ب یا درمان ترکیبی تری آزول + اکینوکاندین و نیز انجام آزمون حساسیت دارویی به عوامل ضدقارچ توصیه می‌شود [11].
موکورمایکوزیس (زایگومایکوزیس) توسط گونه‌های رده Mucorales از جمله رایزوپوس (شایع‌ترین) و موکور ایجاد می‌شود. این عفونت در کشورهای در حال توسعه شیوع بیشتری دارد و بیشتر مبتلایان به نقص ایمنی و بدخیمی‌های خونی را درگیر می‌کند. این عفونت تمایل دارد به سرعت سیستمیک شود و در بدن منتشر شود، درنتیجه مرگ‌و‌میر زیادی را سبب می‌شود [13].
فوزاریوزیس مهاجم نیز یکی از مهم‌ترین عفونت‌های قارچی است که تقریباً تنها در بیماران نقص ایمنی بروز می‌کند. این عفونت معمولاً به شکل منتشر در می‌آید و اغلب بیماران نوتروپنیک مبتلا به لوکمی حاد یا مبتلایان به نقایص سلول T را درگیر می‌کند؛ به‌ویژه بیمارانی که پیوند سلول‌های بنیادی خون‌ساز دریافت کرده‌اند و به دلیل بروز واکنش پیوند بر علیه بدن داروهای کورتیکوستروئید دریافت می‌کنند، را درگیر می‌کند [14, 15, 16].
درمان عفونت‌های فوزاریوزیس مهاجم با محدودیت‌هایی همراه است، زیرا که به تری‌آزول‌های جدید رایج در درمان عفونت‌های قارچی سیستمیک مثل وریکونازول و پساکونازول مقاومت نسبی پیدا کرده است [15]. گونه‌های فوزاریومی نسبت به داروهای ضدقارچی مقاومت بیشتری از سایر قارچ‌های مهاجم دارند.
در سالیان اخیر مقاومت دارویی قارچ‌های بیماری‌زا به صورت مشکل جدی‌تری برای نظام سلامت درآمده است. به علاوه الگوی حساسیت دارویی عوامل بیماری‌زا در مناطق متفاوت جغرافیایی تفاوت‌هایی با دستورالعمل‌های بین‌المللی دارد. به طوری که در بعضی موارد دستورالعمل‌های درمانی بین‌المللی برای درمان عفونت کافی نیستند. بنابراین تعیین منطقه‌ای الگوی حساسیت دارویی عفونت‌ها برای هر منطقه ارزشمند است. مطالعه حاضر به بررسی فراوانی قارچ‌های فرصت‌طلب، به‌ویژه کاندیدا، آسپرژیلوس، زایگومیست‌ها و فوزاریوم‌ها در هوا و سطوح بخش‌های ویژه بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک و تعیین حساسیت دارویی گونه‌های جداشده نسبت به آزول‌ها، آمفوتریسین B و کاسپوفانژین می‌پردازد.
مواد و روش‌ها
این مطالعه توصیفی مقطعی به مدت یک سال در بخش‌های ویژه و پرخطر بیمارستان‌های آموزشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک انجام شد. نمونه‌برداری از هوا و سطوح مربوط به هفت بخش پرخطر و ویژه بیمارستان حضرت ولی‌عصر (عج) (بخش‌های مراقبت ویژه اعصاب، مراقبت ویژه جراحی اعصاب، مراقبت ویژه جراحی، سوختگی، عفونی، ایزوله تنفسی و اتاق عمل)، پنج بخش بیمارستان امیرالمؤمنین (ع) (بخش‌های مراقبت ویژه داخلی، مراقبت ویژه جراحی، مراقبت‌های ویژه قلب باز، قلب و ریه و داخلی B مربوط به بیماران کلیوی و خودایمنی و دیابتی)، دو بخش بیمارستان آیت الله خوانساری (ره) (بخش‌های مراقبت‌های ویژه هماتولوژی و خون)، 6 بخش بیمارستان امیر کبیر (بخش‌های عفونی اطفال، مراقبت‌های ویژه اطفال، نوزادان، مراقبت‌های ویژه نوزادان، بخش خون و سرطان اطفال) و دو بخش بیمارستان آیت الله طالقانی (بخش‌های نوزادان و مراقبت ویژه نوزادان) انجام شد.
نمونه‌برداری از هوا و سطوح بیمارستانی
درمجموع 63 نمونه از هوا و 63 نمونه از سطوح با تکرار (duplicate) برداشت شد. نمونه‌برداری از هوا به روش فعال با استفاده از نمونه‌بردار تک‌مرحله‌ای اندرسن ساخت شرکت SKC انگلستان (روش استاندارد NIOSH) در دبی 28/3 و زمان 5 دقیقه روی محیط کشت سابرودکستروز آگار (ساخت شرکت مرک آلمان) حاوی کلرامفنیکل انجام شد [17]. دستگاه نمونه‌برداری در ارتفاع تنفسی افراد (حدود 1/5 متر از سطح زمین) و با حفظ فاصله یک متر از دیوار و موانع قرار داده شد. قبل از هر بار نمونه‌برداری و قرار دادن پلیت حاوی محیط کشت، عمل استریل کردن دستگاه نمونه‌برداری با استفاده از هیپوکلریت سدیم انجام شد. هم‌زمان با نمونه‌برداری هوا، عمل نمونه‌برداری از سطوح هر بخش نیز با استفاده از یک سواپ مرطوب استریل به‌طور تصادفی از سطوح متفاوت هر بخش برداشت شده و به صورت خطی روی محیط کشت سابرودکستروزآگار حاوی کلرامفنیکل کشت داده شد. بعد از نمونه‌برداری، نمونه‌ها با رعایت زنجیره سرد به آزمایشگاه منتقل شد. نمونه‌ها به مدت 7 تا 10 روز در دمای 28 درجه نگهداری شده و روزانه از نظر تشکیل کلنی پایش شدند. شناسایی اولیه کلنی قارچ‌ها با استفاده از ویژگی‌های ظاهری و میکروسکوپی آن‌ها صورت گرفت.
تست حساسیت دارویی
نمونه‌های مطالعه‌شده نسبت به داروهای ضدقارچی مطابق با روش استاندارد CLSI- M38A2 انجام شد. برای بررسی و ارزیابی MIC در سه سری دوتایی میکروپلیت 96خانه‌ای برای گونه‌های قارچی مهم جداشده (از هوا و سطوح بخش‌های ویژه بیمارستان‌های شهر اراک) استفاده و مطابق با روش Microdilution Broth تست حساسیت دارویی انجام شد [18].
از کشت‌های هریک از کلنی‌های ایزوله‌شده در لوله‌های حاوی محیط کشت پتیتو دکستروز آگار (مرک، آلمان) با اضافه کردن یک میلی‌لیتر آب مقطر استریل و یک قطره توئین 20، سوسپانسیون اولیه اسپور یا کونیدی تهیه و سپس به مدت 15 ثانیه سوسپانسیون تهیه‌شده را خوب مخلوط (ورتکس) کرده و اسپورها و کونیدی‌های سوسپانسیون فوق را با روش چشمی در رقت‌های متوالی مناسب با آب مقطر به رقتی معادل با نیم مک فارلند (105×2-5) رساندیم [18].
طبق راهنمای CLSI داروها، برای تهیه محلول‌های استوک 1600 میکروگرم بر میلی‌لیتر از داروهای وریکونازول (سیگما، آلمان)، آمفوتریسین ب (های مدیا، هند)، ایتراکونازول (سیگما، آلمان) و کاسپوفانژین (سیگما، آلمان) استفاده شد، 0/08 گرم پودرهای داروهای فوق را جداگانه با 50 میلی‌لیتر DMSO (سیگما، آلمان) حل و در دمای اتاق به مدت 30 دقیقه نگهداری کردیم تا حل شوند. برای انجام تست میکرودایلوشن، رقت‌های 0/0313 تا 16 میکروگرم بر میلی‌لیتر از ایتراکونازول (ITR)، رقت‌های 8-0/8 میکروگرم بر میلی‌لیتر از کاسپوفانژین (CAP)، رقت‌های 1- 0/025 میکروگرم بر میلی‌لیتر از وریکونازول (VRC)، رقت‌های 2 الی 0/5 میکروگرم بر میلی‌لیتر آمفوتریسین ب (AmB) تهیه شد. برای تهیه رقت‌های 8-0/025 میکروگرم بر میلی‌لیتر از کتوکونازول (Ket) 2 میکروگرم پودر (سیگما، آلمان) این دارو را در 1 میلی‌لیتر متانول حل و در دمای اتاق به مدت 30 دقیقه نگهداری کردیم تا کاملاً حل شود [18].
طبق پروتکل تست Microdillution Broth، رقت‌های سریال برای هر داروی مورد بررسی در رقت‌های ذکرشده در میکروپلیت‌های مسطح 96 خانه‌ای به مقدار µl 100 برای هر چاهک تهیه شد، به طوری که چاهک اول حاوی بیشترین غلظت و چاهک دو تا مانده به آخر حاوی کمترین غلظت دارو بود. در چاهک‌های اول تا چاهک‌های دو تا مانده به آخر مقدار 100 میکرولیتر محیط RPMI (سیگما، آلمان) اضافه شد، در ادامه 100 میکرولیتر از سوسپانسیون تلقیحی نهایی به هر چاهک اضافه شد. بدین‌ترتیب این دو 1:1 رقیق شده و به غلظت نهایی رسیدند. چاهک یکی مانده به آخر حاوی 200 میکرولیتر محیط RPMI و فاقد دارو و ارگانیسم به عنوان کنترل منفی و چاهک آخر حاوی 100 میکرولیتر محیط RPMI بدون دارو و 100 میکرولیتر از سوسپانسیون تلقیحی و کنترل مثبت برای مقایسه رشد با سایر چاهک‌ها در نظر گرفته شد. در ادامه میکروپلیت‌ها در دمای 35 درجه سانتی‌گراد، به مدت 48 ساعت انکوبه و نمونه‌ها در سه سری دوتایی کار شدند. طبق دستورالعمل برای خواندن نتایج MIC به صورت چشمی به کمک یک آینه با بزرگ‌نمایی و مقایسه رشد قارچ در هر رقت و چاهک با حفره کنترل مثبت که رشد 100 درصد دارد، انجام گرفت. در این روش MIC یعنی پایین‌ترین غلظت دارویی بعد از 48 ساعت انکوباسیون هیچ رشد قارچ مشاهده نمیشود.
یافته‌ها
در جدول شماره 1 گونه‌های قارچی جداشده هوا و سطوح بخش‌های ویژه و پرخطر بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک نشان داده شده است.
.jpg)
جدول شماره 2 گونه‌های قارچی بیماری‌زای جداشده از نمونه‌های هوا و سطوح مربوط به بخش‌های گوناگون بررسی‌شده را نشان می‌دهد.
.jpg)
نتایج حاصل از ارزیابی گونه‌های بیماری‌زای جداشده نسبت به داروهای ضدقارچی کتوکونازول، ایتراکونازول، وریکونازول، آمفوتریسین ب و کاسپوفانژین در جداول شماره 3 و 4 آورده شده است.
.jpg)
جدول شماره 3 کمترین غلظت مهارکننده (MIC) داروی ضدقارچی را درباره هریک از گونه‌های جداشده نشان می‌دهد. جدول شماره 4 نیز گونه‌های بیماری‌زا را از نظر حساس یا مقاوم بودن به هریک از داروهای مورد بررسی دسته‌بندی می‌کند.
.jpg)
بحث
قارچ‌های فرصت‌طلب بیمارستانی شامل مخمر کاندیدا، گونه‌های آسپرژیلوس، زایگومیست (شامل موکور و رایزوپوس) و فوزاریوم است که در بیماران پرخطر می‌توانند موجب بروز عفونت‌های مهاجم و به سرعت پیش‌رونده شوند. در نتیجه نیازمند ظن تشخیصی به‌موقع و درمان سریع هستند. درمان این قارچ‌ها معمولاً در بیماران دارای ایمنی سالم موجب بروز عفونت، به‌ویژه عفونت‌های مهاجم نمیشود [2, 1].
در مطالعه حاضر ارگانیسم‌های بیماری‌زایی که از 102 نمونه بخش‌های پرخطر بیمارستان‌های آموزشی اراک جدا شدند شامل این موارد بودند: آسپرژیلوس نایجر هشت مورد، آسپرژیلوس فلاووس چهار مورد، آسپرژیلوس فومیگاتوس دو مورد، موکور یک مورد، رایزوپوس دو مورد، فوزاریوم یک مورد. نکته جالب توجه آنکه هیچ گونه‌ای از مخمر کاندیدا در این مطالعه جدا نشد. با توجه به این که کاندیدا از جمله قارچ‌های فلور نرمال بدن بیماران به شمار می‌رود [4]، می‌توان علت احتمالی بروز نتیجه منفی برای کاندیدا را رعایت مناسب نکات بهداشتی توسط کادر درمانی بخش‌ها دانست.
در مطالعه‌ای که نصراللهی عمران در شهر تنکابن با تمرکز بر گونه‌های آسپرژیلوس موجود در ICUها انجام داد، از کل 160 نمونه آسپرژیلوس جداشده، پنج مورد آسپرژیلوس فلاووس، سه مورد آسپرژیلوس سیدوئی، دو مورد آسپرژیلوس اوریزه آ و یک مورد آسپرژیلوس فومیگاتوس بودند [19]. در مقایسه با مطالعه حاضر، اگرچه ایزوله‌های جداشده تا حدی متفاوت هستند ولی از نظر شیوع بیشتر آسپرژیلوس فلاووس نسبت به آسپرژیلوس فومیگاتوس در محیط‌های بیمارستانی بین دو مطالعه همخوانی وجود دارد.
همچنین در مطالعه‌ای که مسیبی و همکاران روی نمونه آب سیستم‌های سرمایشی مرطوب در بیمارستان‌های اراک انجام دادند، شش مورد آسپرژیلوس فومیگاتوس، شش مورد آسپرژیلوس فلاووس، شش مورد کاندیدا آلبیکنس، سه مورد گونه‌های موکور، دو مورد آسپرژیلوس نایجر، دو مورد گونه‌های رایزوپوس، یک مورد فوزاریوم و یک مورد کاندیدا پاراپسیلوزیس جدا کردند. در این مطالعه جایگاه گونه‌های آسپرژیلوس به عنوان شایع‌ترین ارگانیسم قارچی جداشده از نمونه‌های بیمارستانی تأکید شد که با مطالعه حاضر مشابهت دارد [20].
در مطالعه‌ای که بصیری و همکاران در بیمارستان عشایر شهر خرم‌آباد استان لرستان انجام دادند، بخش عفونی بیمارستان آلوده‌ترین بخش و اتاق عمل پاکیزه‌ترین بخش از نظر آلودگی قارچی بود [21]. در مطالعه حاضر پاکیزه‌ترین بخش‌ها شامل بخش‌های نوزادان بیمارستان امیرکبیر و ICU جراحی و ICU مغز و اعصاب بیمارستان ولی‌عصر (عج)، بدون ارگانیسم بیماری‌زا و آلوده‌ترین بخش، بخش سوختگی بیمارستان ولی‌عصر (عج) با دو ارگانیسم بیماری‌زا بود. در مطالعه فوق شایع‌ترین قارچ جداشده از نمونه‌ها گونه‌های کلادوسپوریوم بود که با نتایج مطالعه حاضر مطابقت دارد.
در پژوهش حاضر مقاومت دارویی به داروهای در دسترس مثل کتوکونازول، ایتراکونازول، وریکونازول، کاسپوفانژین و آمفوتریسین B بررسی شد. نکته‌ای که در ابتدا شایان تذکر است اینکه بررسی مقاومت دارویی کاندیداها در این مطالعه مقدور نشد، زیرا در میان ایزوله‌ها گونه‌های کاندیدا جدا نشدند. ایزوله‌های جداشده شامل گونه‌های آسپرژیلوس (نایجر، فلاووس و فومیگاتوس)، رایزوپوس، موکور و فوزاریوم بودند. در این بررسی گونه‌های آسپرژیلوس فلاووس، موکور، رایزوپوس و فوزاریوم نسبت به همه داروهای بررسی‌شده حساس بودند. آسپرژیلوس فومیگاتوس در یک مورد نسبت به ایتراکونازول نیمه‌حساس بود و آسپرژیلوس نایجر در یک مورد نسبت به کتوکونازول نیمه‌حساس و نسبت به ایتراکونازول مقاوم بود که توجه‌برانگیز است.
در پژوهش نصراللهی عمران به مقایسه حساسیت دارویی گونه‌های آسپرژیلوس جداشده، پرداخته شده است و مشابه با مطالعه ما، آسپرژیلوس فلاووس به همه پنج داروی بررسی‌شده حساس بوده است. آسپرژیلوس فومیگاتوس و آسپرژیلوس سیدوئی به آمفوتریسین ب و وریکونازول حساس و به ایتراکونازول مقاوم بودند. آسپرژیلوس سیدوئی ببهکاسپوفانژین نیز مقاوم بود در حالی که آسپرژیلوس فومیگاتوس به این دارو نیز حساس بود [19]. نمای عمومی نتایج مقاومت دارویی گونه‌های آسپرژیلوس حاصل از این پژوهش با نتایج مطالعه حجتی‌نیا و همکاران [22]، دنینگ و همکاران [23]، آراجو و همکاران [24]، شی [25] و تانگ و همکاران [26] مشابهت داشت؛ بنابراین می‌توان از داروهای وریکونازول و کاسپوفانژین به‌عنوان مؤثرترین داروهای خط اول درمان آسپرژیلوز مهاجم نام برد.
در دستورالعمل‌های درمان دارویی موکورمایکوزیس، اشکال لیپیدی آمفوتریسین B به عنوان درمان خط اول مطرح هستند و پساکونازول به‌عنوان درمان دارویی جایگزین استفاده می‌شود. این دستورالعمل در مطالعه مروری اخیر پیلمیس و همکاران نیز تأکید شده است [27]. این دستورالعمل با یافته‌های مطالعه حاضر مبنی بر اینکه مقاومتی نسبت به آمفوتریسین B در ایزوله‌های موکور و رایزوپوس دیده نشد، همخوانی دارد.
مطالعات گذشته نشان داده‌اند که رژیم دارویی مناسب برای فوزاریوزیس مهاجم آزول جدید مثل وریکونازول به همراه آمفوتریسین ب است. البته این الگو در مورد گونه فوزاریوم سولانی که مهم‌ترین گونه بیماری‌زای فوزاریوم نیز هست به صورت مقاومت بیشتر نسبت به وریکونازول و حساسیت بیشتر به آمفوتریسین ب است [28، 29]. در مطالعه حاضر تنها فوزاریوم جداشده به هر دو داروی اشاره‌شده حساس بود.
نتیجه‌گیری
در این مطالعه قارچ‌های موجود در هوا و سطوح بیمارستان‌های آموزشی شهرستان اراک تعیین شدند و الگوی حساسیت دارویی گونه‌های مهاجم تعیین شد. طبق این بررسی، داروهای جدید اشاره‌شده در دستورالعمل‌ها شامل وریکونازول و کاسپوفانژین (داروهای اصلی درمان آسپرژیلوز مهاجم) و نیز داروی آمفوتریسین ب (داروی اصلی درمان موکورمایکوز و فوزاریوز مهاجم) بر تمام ایزوله‌های جداشده در بررسی حاضر مؤثر هستند.
ملاحظات اخلاقی
پیروی از اصول اخلاق پژوهش
این مطالعه در کمیته اخلاق شورای پژوهشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک، به تصویب رسیده است (کد اخلاق: IR.ARAKMU.REC.1395.315).
حامی مالی
این مطالعه از طرح تحقیقاتی تأیید شده توسط دانشگاه علوم پزشکی اراک استخراج شده است (کد: 2679).
مشارکت نویسندگان
تمامی نویسندگان در نوشتن این مقاله به یک اندازه مشارکت داشتند.
تعارض منافع
نویسندگان تصریح می‌کنند که تضاد منافعی برای پژوهش حاضر وجود ندارد.
تشکر و قدردانی
بدین‌وسیله از حمایت‌های معاونت پژوهشی دانشگاه علوم‌پزشکی اراک و پرسنل محترم بخش‌های گوناگون بیمارستان‌های آموزشی زیر نظر دانشگاه علوم‌پزشکی اراک تقدیر و تشکر می‌شود.
References
1.Morace G, Borghi E. Fungal infections in ICU patients: Epidemiology and the role of diagnostics. Minerva Anestesiol. 2010; 76(11):950-6. [PMID]
2.Shoham S, Marwaha S. Invasive fungal infections in the ICU. J Intensive Care Med. 2010; 25(2):78-92. [DOI:10.1177/0885066609355262] [PMID]
3.Fridkin SK, Jarvis WR. Epidemiology of nosocomial fungal infections. Clin Microbiol Rev. 1996; 9(4):499-511. [DOI:10.1128/CMR.9.4.499] [PMID]
4.McCarty TP, Pappas PG. Invasive Candidiasis. Infect Dis Clin North Am. 2016; 30(1):103-24. [DOI:10.1016/j.idc.2015.10.013] [PMID]
5.Arendrup MC, Andersen JS, Holten MK, Krarup KB, Reiter N, Schierbeck J, et al. Diagnostic performance of T2Candida among ICU patients with risk factors for invasive candidiasis. Open Forum Infect Dis. 2019; 6(5):ofz136. [DOI:10.1093/ofid/ofz136] [PMID] [PMCID]
6.Magill SS, Edwards JR, Bamberg W, Beldavs ZG, Dumyati G, Kainer MA, et al. Emerging infections program healthcare-associated infections and antimicrobial use prevalence survey team. Multistate point-prevalence survey of health care-associated infections. N Engl J Med. 2014; 370(13):1198-208. [DOI:10.1056/NEJMoa1306801] [PMID] [PMCID]
7.Pittet D, Monod M, Suter PM, Frenk E, Auckenthaler R. Candida colonization and subsequent infections in critically ill surgical patients. Ann Surg. 1994; 220(6):751-8. [DOI:10.1097/00000658-199412000-00008] [PMID] [PMCID]
8.Blumberg HM, Jarvis WR, Soucie JM, Edwards JE, Patterson JE, Pfaller MA, et al. National Epidemiology of Mycoses Survey(NEMIS) study group. Risk factors for candidal bloodstream infections in surgical intensive care unit patients: The NEMIS prospective multicenter study. The national epidemiology of mycosis survey. Clin Infect Dis. 2001; 33(2):177-86. [DOI:10.1086/321811] [PMID]
9.Neofytos D, Horn D, Anaissie E, Steinbach W, Olyaei A, Fishman J, et al. Epidemiology and outcome of invasive fungal infection in adult hematopoietic stem cell transplant recipients: Analysis of multicenter Prospective Antifungal Therapy (PATH) Alliance registry. Clin Infect Dis. 2009; 48(3):265-73. [DOI:10.1086/595846] [PMID]
10.Darling BA, Milder EA. Invasive aspergillosis. Pediatr Rev. 2018; 39(9):476-8. [DOI:10.1542/pir.2017-0129] [PMID]
11.Cadena J, Thompson GR 3rd, Patterson TF. Invasive aspergillosis: Current strategies for diagnosis and management. Infect Dis Clin North Am. 2016; 30(1):125-42. [DOI:10.1016/j.idc.2015.10.015] [PMID]
12.Patterson TF, Kirkpatrick WR, White M, Hiemenz JW, Wingard JR, Dupont B, et al. Invasive aspergillosis. Disease spectrum, treatment practices, and outcomes. I3 aspergillus study group. Medicine (Baltimore). 2000; 79(4):250-60. [DOI:10.1097/00005792-200007000-00006] [PMID]
13.Skiada A, Lass-Floerl C, Klimko N, Ibrahim A, Roilides E, Petrikkos G. Challenges in the diagnosis and treatment of mucormycosis. Med Mycol. 2018; 56(S 1):93-101. [DOI:10.1093/mmy/myx101] [PMID] [PMCID]
14.Nucci M, Marr KA, Vehreschild M , de Souza CA, Velasco E, Cappellano P, et al. Improvement in the outcome of invasive fusariosis in the last decade. Clin Microbiol Infect. 2014; 20(6):580-5. [DOI:10.1111/1469-0691.12409] [PMID]
15.Nucci M, Anaissie E. Fusarium infections in immunocompromised patients. Clin Microbiol Rev. 2007; 20(4):695-704. [DOI:10.1128/CMR.00014-07] [PMID] [PMCID]
16.Nucci M, Anaissie EJ, Queiroz-Telles F, Martins CA, Trabasso P, Solza C, et al. Outcome predictors of 84 patients with hematologic malignancies and Fusarium infection. Cancer. 2003; 98(2):315-9. [DOI:10.1002/cncr.11510] [PMID]
17.Mirhoseini S H, Ariyan F, Mohammadi S. [Quantitative and qualitative monitoring of airborne bacteria and fungi and their relationship with environmental parameters in two selected primary schools (Persian)]. J Arak Univ Med Sci. 2020; 22(6):242-51. [DOI:10.32598/JAMS.22.6.5931.1]
18.John HR. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of filamentous fungi, approved standard. M38-A2. Clin Lab Stand Inst. 2008; 28(16):1-35. https://ci.nii.ac.jp/naid/20001565008/
19.Nasrolahiomran A. [Evatuation of drug susceptibility of aspergillus species isolated from ICU of hospitals in invitro (Persian)]. Sci J ilam Univ Med Sci. 2018; 25(6):130-40. [DOI:10.29252/sjimu.25.6.130]
20.Mosayebi M, Eslamirad Z, Hajihossein R, Ghorbanzadeh B, Shahverdi M, Didehdar M. Evaluating of fungal contamination in hospital wet cooling systems in Markazi province, Central Iran. J Mycol Med. 2017; 27(3):334-8. [DOI:10.1016/j.mycmed.2017.04.003] [PMID]
21.Basiri H, Godini H, Omidi Khaniabadi Y, Sepahvand A. [Study of indoor and ambient air fungual bioaerosols and its relation with particulate matters in a hospital of Khorramabad (Persian)]. Yafte. 2016; 17(4):25-34. http://eprints.lums.ac.ir/54/
22.Hojatinia H, Sabokbar A. Sensitivity determination of Aspergilus Flavus to Itraconazol, Voriconazol and Caspofungin. N Cell Mol Biotechnol J. 2016; 6(22):51-8. http://ncmbjpiau.ir/article-1-810-en.html
23.Denning DW, Ribaud P, Milpied N, Caillot D, Herbrecht R, Thiel E, et al. Efficacy and safety of voriconazole in the treatment of acute invasive aspergillosis. Clin Infect Dis. 2002; 34(5):563-71. [DOI:10.1086/324620] [PMID]
24.Araujo R, Coutinho I, Espinel-Ingroff A. Rapid method for testing the susceptibility of Aspergillus fumigatus to amphotericin B, itraconazole, voriconazole and posaconazole by assessment of oxygen consumption. J Antimicrob Chemother. 2008; 62(6):1277-80. [DOI:10.1093/jac/dkn415] [PMID]
25.Shi JY, Xu YC, Shi Y, Lü HX, Liu Y, Zhao WS, et al. In vitro susceptibility testing of Aspergillus spp. against voriconazole, itraconazole, posaconazole, amphotericin B and caspofungin. Chin Med J. 2010; 123(19):2706-9. [PMID]
26.Dudakova A, Spiess B, Tangwattanachuleeporn M, Sasse C, Buchheidt D, Weig M, et al. Molecular tools for the detection and deduction of azole antifungal drug resistance phenotypes in aspergillus species. Clin Microbiol Rev. 2017; 30(4):1065-91. [DOI:10.1128/CMR.00095-16] [PMID] [PMCID]
27.Pilmis B, Alanio A, Lortholary O, Lanternier F. Recent advances in the understanding and management of mucormycosis. F1000Res. 2018; 7:F1000 Faculty Rev-1429. [DOI:10.12688/f1000research.15081.1] [PMID] [PMCID]
28.McCarthy MW, Katragkou A, Iosifidis E, Roilides E, Walsh TJ. Recent advances in the treatment of scedosporiosis and fusariosis. J Fungi (Basel). 2018; 4(2):73. [DOI:10.3390/jof4020073] [PMID] [PMCID]
29.Arnoni MV, Paula CR, Auler ME, Simões CCN, Nakano S, Szeszs MW, et al. Infections caused by fusarium species in pediatric cancer patients and review of published literature. Mycopathologia. 2018; 183(6):941-9. [DOI:10.1007/s11046-018-0257-6] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
