دوره 21، شماره 3 - ( دوماهنامه خرداد و تیر 1397 )
جلد 21 شماره 3 صفحات 64-53 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Dorostghoal M, Seyyednejad S M, Jabari A. Effects of Dorema Aucheri Extract on Oxidative Status and Reproductive Parameters in Adult Male Rats. J Arak Uni Med Sci 2018; 21 (3) :53-64
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-5635-fa.html
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-5635-fa.html
درست قول مهران، سیدنژاد سید منصور، جباری ایوب. اثرات عصاره بیلهر (Dorema aucheri) بر وضعیت اکسیداتیو و پارامترهای تولیدمثلی موش-های صحرایی نر بالغ. مجله دانشگاه علوم پزشكي اراك. 1397; 21 (3) :53-64
1- گروه زیست شناسی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران. ، dorostghoal@gmail.com
2- گروه زیست شناسی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران.
2- گروه زیست شناسی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران.
چکیده: (2543 مشاهده)
زمینه و هدف: امروزه نگرانی های پیشرونده ای در خصوص کاهش سلامت تولیدمثلی مردان وجود دارد. استرس اکسیداتیو به عنوان یکی از مکانیسم های احتمالی ایجاد اختلال در سیستم تولیدمثلی مطرح می شود. بیلهر از جمله گیاهان طب سنتی ایران بوده که خواص افزایشدهندگی توان باروری مردان برای آن پیشنهاد شده است. مطالعه حاضر با هدف ارزیابی اثرات بیلهر بر وضعیت اکسیداتیو و پارامترهای تولیدمثلی موشهای صحرایی نر انجام گرفت.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی، موشهای صحرایی نر بالغ سالم به مدت 70 روز مقادیر 100، 200 و 400 میلیگرم بر کیلوگرم عصاره اتانولی برگهای بیلهر را از طریق گاواژ دریافت کردند. نمونههای خون جهت سنجش تستوسترون، LH و FSH اخذ گردید. وزن اندامهای تولیدمثلی، غلظت، قابلیت تحرک و مورفولوژی اسپرم، قطر لوله های اسپرم ساز، ارتفاع اپیتلیوم زایا و نیز سطوح مالوندیآلدئید، سوپراکسید دسموتاز و گلوتاتیون پراکسیداز بافت بیضه ارزیابی شد.
یافته ها: وزن بیضه و اپیدیدیم در موشهای صحرایی تحت تیمار با مقادیر 200 و 400 میلیگرم بر کیلوگرم عصاره به طور معنیداری افزایش یافت. در گروههای تیمار غلظت اسپرم و درصد اسپرمهای با مورفولوژی نرمال به طور معنیداری(05/0>p) بالاتر بود. سطوح سرمی هورمونهای تستوسترون، FSH و LH در گروههای تیمار تفاوتی با گروه کنترل نشان نداد. عصاره بیلهر سطوح مالوندیآلدئید را به طور معنی داری(05/0>p) کاهش داده و موجب افزایش معنیدار (05/0>p) سطوح آنزیمهای سوپراکسیددسموتاز و گلوتاتیون پراکسیداز در بافت بیضه موشهای صحرایی گردید.
نتیجه گیری: مطالعه حاضر نشان میدهد عصاره برگ های بیلهر موجب بهبود پارامترهای تولیدمثلی شده که میتواند به دلیل ویژگی های آنتی اکسیدانی این گیاه باشد.
مواد و روشها: در این مطالعه تجربی، موشهای صحرایی نر بالغ سالم به مدت 70 روز مقادیر 100، 200 و 400 میلیگرم بر کیلوگرم عصاره اتانولی برگهای بیلهر را از طریق گاواژ دریافت کردند. نمونههای خون جهت سنجش تستوسترون، LH و FSH اخذ گردید. وزن اندامهای تولیدمثلی، غلظت، قابلیت تحرک و مورفولوژی اسپرم، قطر لوله های اسپرم ساز، ارتفاع اپیتلیوم زایا و نیز سطوح مالوندیآلدئید، سوپراکسید دسموتاز و گلوتاتیون پراکسیداز بافت بیضه ارزیابی شد.
یافته ها: وزن بیضه و اپیدیدیم در موشهای صحرایی تحت تیمار با مقادیر 200 و 400 میلیگرم بر کیلوگرم عصاره به طور معنیداری افزایش یافت. در گروههای تیمار غلظت اسپرم و درصد اسپرمهای با مورفولوژی نرمال به طور معنیداری(05/0>p) بالاتر بود. سطوح سرمی هورمونهای تستوسترون، FSH و LH در گروههای تیمار تفاوتی با گروه کنترل نشان نداد. عصاره بیلهر سطوح مالوندیآلدئید را به طور معنی داری(05/0>p) کاهش داده و موجب افزایش معنیدار (05/0>p) سطوح آنزیمهای سوپراکسیددسموتاز و گلوتاتیون پراکسیداز در بافت بیضه موشهای صحرایی گردید.
نتیجه گیری: مطالعه حاضر نشان میدهد عصاره برگ های بیلهر موجب بهبود پارامترهای تولیدمثلی شده که میتواند به دلیل ویژگی های آنتی اکسیدانی این گیاه باشد.
فهرست منابع
1. Batrup E, Junge M. Antiandrogenic pesticides disrupt sexual characteristics in the adult male guppy (Poecillia reticulata). Environ Health Perspect. 2001; 109: 1063-71.
2. Evenson DP, Larson KL, Jost LK. Sperm chromatin structure assay: its clinical use for detecting sperm DNA fragmentation in male infertility and comparisons with other techniques. J Androl. 2002; 23: 25-43.
3. Evans HJ. Mutation and mutagenesis in inherited and acquired human disease. Mutat Res. 1996; 351: 89-103.
4. Robbins WA, Xun L, Jia J, Kennedy N, Elashoff DA, Ping L. Chronic boron exposure and human semen parameters. Reprod Toxicol. 2010; 29: 184-90.
5. Ko EY, Sabanegh Jr ES, Agarwal A. Male infertility testing: reactive oxygen species and antioxidant capacity. Fertil Steril. 2014; 102: 1518-27.
6. Adewoyin M, Ibrahim M, Roszaman R, Lokman Md Isa M, Aizura Mat Alewi N, Abdul Rafa A, et al. Male Infertility: The effect of natural antioxidants and phytocompounds on seminal oxidative stress. Diseases. 2017; 5(1): 9.
7. D'Cruz SC, Vaithinathan S, Jubendradass R, Mathur PP. Effects of plants and plant products on the testis. Asian J Androl. 2010; 12: 468-79.
8. Mosaddegh M, Naghibi F, Moazzeni H, Pirani A, Esmaeili S. Ethnobotanical survey of herbal remedies traditionally used in Kohghiluyeh va Boyer Ahmad province of Iran. J Ethnopharmacol. 2012; 141: 80-95.
9. Khanahmadi M, Miraghaee SSH, Karimi I. Evaluation of the antioxidant and antimicrobial properties of Dorema aucheri plant. Iran Red Crescent Med J. 2012; 14(10): 684-5.
10. Ahangarpour A, Teymuri Zamaneh H, Jabari A, Malekshahi Nia H, Heidari H. Antidiabetic and hypolipidemic effects of Dorema aucheri hydroalcoholic leave extract in streptozotocin-nicotinamide induced type2 diabetes in male rats. Iran J Basic Med Sci. 2014; 17: 808-14.
11. Wollenweber E, Dor M, Rostayan A. Dorema aucheri the first Umbelliferous plant found to produce exudates flavonods. Phytochem. 1995; 38(6):1411-27.
12. Bubols GB, Vianna Dda R, Medina-Remon A, von Poser G, Lamuela-Raventos RM, Eifler-Lima VL, et al. The antioxidant activity of coumarins and flavonoids. Mini Rev Med Chem. 2013; 13(3): 318-34.
13. Azarnioushan F, Khatamsaz S, Sadeghi H. The effect of hydroalcoholic extract of Dorema aucheri on blood concentration of gonadotropin and androgen hormones in adult male rats. YUMSJ. 2009; 14: 63-70.
14. Ahangarpour A, Oroojan A, Heydari H. [Effect of hydroalcoholic extract of Dorema aucheri on serum levels of testosterone, FSH and sperm count in nicotinamide-STZ- induced diabetic rat models]. ZUMSJ. 2013; 21(87): 22-31.
15. Hayes W. Principle and Methods of Toxicology. New York: Raven Press; 1989.
16. Paglia DE, Valentine VN. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J Lab Clin Med. 1967; 70: 158-169.
17. Woolliams JA, Wiener G, Anderson PH, Mc Murray CH. Improved method for the determination of blood glutathione. Res Vet Sci. 1983; 34: 253-256.
18. Prins SG, Birch L, Greene GL. Androgen receptor localization in different cell types of the adult rat prostate. Endocrinol. 1991; 129: 3187-99.
19. Tai P, Ascoli M. Reactive Oxygen Species (ROS) play a critical role in the cAMP-induced activation of Ras and the phosphorylation of ERK1/2 in Leydig cells. Mol Endocrinol. 2011; 25: 885-893.
20. Allen JA, Shankara T, Janus P, Buck S, Diemer T, Hales KH, et al. Energized, polarized, and actively respiring mitochondria are required for acute Leydig cell steroidogenesis. Endocrinology. 2006; 147: 3924-3935.
21. Chigurupati S, Son TG, Hyun DH, Lathia JD, Mughal MR, Savell J, Li SC. Lifelong running reduces oxidative stress and degenerative changes in the testes of mice. J Endocrinol. 2008; 199: 333-341.
22. Sönmez M, Türk G, Yüce A. The effect of ascorbic acid supplementation on sperm quality, lipid peroxidation and testosterone levels of male Wistar rats. Theriogenology. 2005; 63: 2063-2072.
23. Atig F, Raffa M, Ben Ali H, Abdelhamid K, Saad A, Ajina M. Altered antioxidant status and increased lipid per-oxidation in seminal plasma of tunisian infertile men. Int J Biol Sci. 2012; 8:139-149.
24. Murawski M, Saczko J, Marcinkowska A, Chwiłkowska A, Gryboś M and Banaś T. Evaluation of superoxide dismutase activity and its impact on semen quality parameters of infertile men. Folia Histochem Cytobiol. 2007; 45 (Suppl 1): 123-126.
25. Hall L, Williams K, Perry AC, Frayne J, Jurry JA. The majority of human glutathione peroxidase type 5(GPX5) transcripts are incorrectly spliced: implications for the role of GPX5 in the male reproductive tract. Biochem J. 1998; 333 (Suppl 1):5-9.
26. Maheshwari A, Misro MM, Aggarwal A, Sharma RK. Nacetyl-L-Cysteine modulates multiple signaling pathways to rescue male germ cells from apoptosis induced by chronic hCG administration to rats. Apoptosis, 2012. Apoptosis. 2012;17(6):551-65.
27. Verhaegen S, McGowan AJ, Brophy AR, Fernandes RS, Cotter TG. Inhibition of apoptosis by antioxidants in the human HL-60 leukemia cell line. Biochem Pharmacol. 1995; 28; 50(7):1021-9.
28. Peiris, L.D.C.; Dhanushka, M.A.T.; Jayathilake, T.A.H.D.G. Evaluation of Aqueous Leaf Extract of Cardiospermum halicacabum (L.) on Fertility of Male Rats. BioMed Res. Int. 2015. 2015; 175726.
29. Mohan, V.R.; Balamurugan, K.; Sakthidevi, G. Fertility enhancement of Polycarpaea corymbosa (L.) Lam (Caryophyllaceae) whole plant on male albino rats. Asian J. Pharm. Clin. Res. 2013; 6 (Suppl. 5): 151–155.
30. Dashti G, Teimourinejad A, Salehi M, Sajadi SE, Torabinia N. [The effect of hydroalcoholic extract of Dorema aucheri on CD40 protein expression in thoracic aorta of male white rabbits fed with hypercholesterolemic diet]. IUMS. 2012; 29(166):1-11.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
