دوره 29، شماره 1 - ( 1-1405 )                   جلد 29 شماره 1 صفحات 18-13 | برگشت به فهرست نسخه ها


XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Ataei Alamdari S, Arjomandzadegan M, Nassaj Manizani M, Ahmadi A. Phenotypic and Genotypic Evaluation of Biofilm Formation in Vancomycin-Resistant Enterococcus Isolates from Cancer Patients. J Arak Uni Med Sci 2026; 29 (1) :13-18
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-8026-fa.html
عطائی علمداری صدف، ارجمندزادگان محمد، نساج مانیزانی مونا، احمدی اعظم. بررسی تشکیل بیوفیلم به روش فنوتیپی و ژنوتیپی در جدایه‌های انتروکوک مقاوم به ونکومایسین (VRE) جدا شده از بیماران مبتلا به سرطان. مجله دانشگاه علوم پزشكي اراك. 1405; 29 (1) :13-18

URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-8026-fa.html


1- گروه میکروب‌شناسی، دانشکده پزشکی،دانشگاه علوم پزشکی اراک، ایران
2- گروه میکروبشناسی، دانشکده پزشکی، مرکز تحقیقات بیماری های عفونی(IDRC )، دانشگاه علوم پزشکی اراک،ایران ، mmatinam81@yahoo.com
3- مرکز تحقیقات بیماری‌های عفونی(IDRC )، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران
چکیده:   (832 مشاهده)
مقدمه: انتروکوک‌های مقاوم به ونکومایسین (Vancomycin-resistant enterococci) VRE از عوامل شایع عفونت‌های بیمارستانی هستند و تشکیل بیوفیلم در آنها می‌تواند با افزایش مقاومت آنتی‌بیوتیکی همراه باشد. این مطالعه با هدف بررسی توانایی بیوفیلم‌سازی ایزوله‌های VRE و الگوی مقاومت دارویی آنها انجام شد.
روش کار: تعداد 70 نمونه مدفوع از بیماران مبتلا به سرطان جمع‌آوری شد. سویه‌های مشکوک به  انتروکوکوس با انجام تست‌های بیوشیمیایی شامل تست کاتالاز (منفی)، رشد در محیط حاوی 5/6 درصد NaCl، تست PYR (مثبت) و توانایی هیدرولیز اسکولین در حضور صفرا مورد بررسی قرارگرفتند. در نهایت، ۲۲ ایزوله انتروکوکوس تأیید و برای بررسی‌های بیشتر نگهداری شدند. مقاومت جدایه‌ها به آنتی‌بیوتیک وانکومایسین با استفاده از روش براث میکرودایلوشن طبق دستورالعملCLSI  انجام شد. تشکیل بیوفیلم به روش میکروپلیت بررسی گردید. شناسایی ژن‌های مرتبط با بیوفیلم‌سازی شامل gelE و cylA با استفاده از واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) انجام شد.
یافته‌ها: نتایج نشان داد که 68/2 درصد جدایه‌ها قادر به تشکیل بیوفیلم بودند. بر اساس میزان جذب نوری در آزمون میکروتیتر پلیت، 2/27 درصد بیوفیلم قوی، 13/6 درصد بیوفیلم با شدت متوسط و 27/2 درصد بیوفیلم ضعیف تشکیل دادند. همچنین 31/8 درصد فاقد توانایی تشکیل بیوفیلم بودند. در بررسی ژنوتیپی با استفاده از روش PCR، ژن‌های gelE و cylA در ایزوله‌های VRE مورد ارزیابی قرار گرفتند نتایج نشان دادند که از مجموع 22 ایزوله، ژن‌های gelE و  cylAبه ترتیب (77/3 و 63/6 درصد) وجود داشتند.
نتیجه‌گیری: تشکیل بیوفیلم می‌تواند نقش مهمی در افزایش مقاومت آنتی‌بیوتیکی ایزوله‌های VRE ایفا می‌کند. شناسایی فاکتورهای بیوفیلم‌سازی می‌تواند در طراحی استراتژی‌های درمانی مؤثر علیه این باکتری‌ها سودمند باشد.
متن کامل [PDF 734 kb]   (175 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي اصیل | موضوع مقاله: علوم پایه
دریافت: 1404/3/6 | پذیرش: 1404/6/18

فهرست منابع
1. Lebreton F, Willems RJ, Gilmore MS. Enterococcus diversity, origins in nature, and gut colonization. Boston: Massachusetts Eye and Ear Infirmary; 2014.
2. Mohamed JA, Huang DB. Biofilm formation by enterococci. J Med Microbiol. 2007;56(Pt 12):1581-8. pmid: 18033823 doi: 10.1099/jmm.0.47331-0
3. Șchiopu P, Toc DA, Colosi IA, Costache C, Ruospo G, Berar G, et al. An overview of the factors involved in biofilm production by the Enterococcus genus. Int J Mol Sci. 2023;24(14):11577. pmid: 37511337 doi: 10.3390/ijms241411577
4. Procop GW. Koneman's Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 7th ed. Philadelphia: Lippincott William, Wilkins; 2017.
5. CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 35th ed. CLSI supplement M100 ed. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2025.
6. Mirzaei R, Yousefimashouf R, Arabestani MR, Sedighi I, Alikhani MY. The issue beyond resistance: Methicillin-resistant Staphylococcus epidermidis biofilm formation is induced by subinhibitory concentrations of cloxacillin, cefazolin, and clindamycin. PLoS One. 2022;17(11):e0277287. pmid: 36350834 doi: 10.1371/journal.pone.0277287
7. Ghazvinian M, Asgharzadeh Marghmalek S, Gholami M, Amir Gholami S, Amiri E, Goli HR. Antimicrobial resistance patterns, virulence genes, and biofilm formation in enterococci strains collected from different sources. BMC Infect Dis. 2024;24(1):274. pmid: 38438983 doi: 10.1186/s12879-024-09117-2
8. Aladarose BE, Said HS, Abdelmegeed ES. Incidence of virulence determinants among enterococcal clinical isolates in Egypt and its association with biofilm formation. Microb Drug Resist. 2019;25(6):880-9. pmid: 30811265 doi: 10.1089/mdr.2018.0320
9. Fallah F, Yousefi M, Pourmand MR, Hashemi A, Alam AN, Afshar D. Phenotypic and genotypic study of biofilm formation in Enterococci isolated from urinary tract infections. Microb Pathog. 2017;108:85-90. pmid: 28483600 doi: 10.1016/j.micpath.2017.05.014
10. Doss Susai backiam A, Duraisamy S, Karuppaiya P, Balakrishnan S, Chandrasekaran B, Kumarasamy A, et al. Antibiotic susceptibility patterns and virulence-associated factors of vancomycin-resistant enterococcal isolates from tertiary care hospitals. Antibiotics (Basel) 2023; 12(6): 981. pmid: 37370300 doi: 10.3390/antibiotics12060981
11. Radford-Smith DE, Anthony DC. Vancomycin-Resistant E. faecium: Addressing Global and Clinical Challenges. Antibiotics (Basel). 2025;14(5):522. pmid: 40426588 doi: 10.3390/antibiotics14050522
12. Nair P, Sankar S, Neelusree P. Study on Biofilm formation among Enterococcus isolates and Association with their antibiotic resistance patterns. Cureus. 2024;16(2):e53594. pmid: 38449981 doi: 10.7759/cureus.53594
13. Klibi N, Ben Slama K, Sáenz Y, Masmoudi A, Zanetti S, Sechi LA, et al. Detection of virulence factors in high-level gentamicin-resistant Enterococcus faecalis and Enterococcus faecium isolates from a Tunisian hospital. Can J Microbiol. 2007;53(3):372-9. pmid: 17538646 doi: 10.1139/W06-136
14. Mohamed JA, Murray BE. Lack of correlation of gelatinase production and biofilm formation in a large collection of Enterococcus faecalis isolates. J Clin Microbiol. 2005;43(10):5405-7. pmid: 16208033 doi: 10.1128/JCM.43.10.5405-5407.2005
15. Yang J-x, Liu C-w, Wu F-w, Zhu L, Liang G-w. Molecular characterization and biofilm formation ability of Enterococcus faecium and Enterococcus faecalis bloodstream isolates from a Chinese tertiary hospital in Beijing. Int Microbiol. 2024;27(3):929-39. pmid: 37932582 doi: 10.1007/s10123-023-00441-2
16. Lin P-Y, Chan S-Y, Stern A, Chen P-H, Yang H-C. Epidemiological profiles and pathogenicity of Vancomycin-resistant Enterococcus faecium clinical isolates in Taiwan. PeerJ. 2023;11:e14859. pmid: 36855433 doi: 10.7717/peerj.14859
17. Soltani S, Arshadi M, Getso MI, Aminharati F, Mahmoudi M, Pourmand MR. Prevalence of virulence genes and their association with biofilm formation in VRE faecium isolates from Ahvaz, Iran. J Infect Dev Ctries. 2018;12(11):970-7. pmid: 32012126 doi: 10.3855/jidc.10078
18. Sharma P, Kaur S, Kaur R, Kaur M, Kaur S. Proteinaceous secretory metabolites of probiotic human commensal Enterococcus hirae 20c, E. faecium 12a and L12b as antiproliferative agents against cancer cell lines. Front Microbiol. 2018;9:948. pmid: 29867856 doi: 10.3389/fmicb.2018.00948

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله دانشگاه علوم پزشکی اراک می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2026 CC BY-NC 4.0 | Journal of Arak University of Medical Sciences

Designed & Developed by : Yektaweb