دوره 29، شماره 2 - ( 3-1405 )
جلد 29 شماره 2 صفحات 193-182 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Karam Ashtiani A H, Sayyadi M, Hassani S. The Role of Long Non-Coding RNAs in Apoptosis of Acute Myeloblastic Leukemia Cells. J Arak Uni Med Sci 2026; 29 (2) :182-193
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-7408-fa.html
URL: http://jams.arakmu.ac.ir/article-1-7408-fa.html
کرم آشتیانی امیرحسین، صیادی محمد، حسنی سعید. نقش RNAهای طویل غیرکدکننده در آپوپتوز سلولهای لوسمی حاد میلوبلاستی. مجله دانشگاه علوم پزشكي اراك. 1405; 29 (2) :182-193
1- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران و 2. گروه خونشناسی آزمایشگاهی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
2- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران
3- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران ،s.hassani@arakmu.ac.ir
2- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران
3- گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اراک، اراک، ایران ،
چکیده: (365 مشاهده)
مقدمه: لوسمی میلوئیدی حاد (Acute myeloid leukemia) AML، یک بدخیمی خونی ناهمگون با پیشآگهی ضعیف و بقای محدود است که این مسأله بهویژه در بیماران مسنتر بارزتر میباشد. باوجود پیشرفتهای حاصل در شیمیدرمانی، روشهای تشخیصی مولکولی و مراقبتهای حمایتی، مقاومت در برابر آپوپتوز همچنان یکی از موانع اصلی در درمان AML محسوب میشود.
شرح مقاله: در سالهای اخیر، RNAهای طویل غیرکدکننده (lncRNAs) بهعنوان تنظیمکنندههای بیان ژن و فرایندهای سلولی از جمله تکثیر، تمایز، آپوپتوز و مقاومت دارویی موردتوجه قرار گرفتهاند. یکی از مکانیسمهای مهم اثرگذاری lncRNAها، عمل بهعنوان RNAهای رقیب درونزا (ceRNA) است که با جذب miRNAها، بیان ژنهای مرتبط با آپوپتوز را تنظیم میکنند. در این مقاله مروری، شواهد موجود در زمینه نقش lncRNAها در تنظیم آپوپتوز در سلولهای AML گردآوری و تحلیل شده است. مطالعات اخیر نشان میدهد که برخی از lncRNAها مانند HOTAIR، UCA1، TUG1 و H19 با مهار آپوپتوز به پیشرفت لوسمی کمک میکنند، درحالیکه برخی دیگر نظیر NEAT1 و DUXAP8 موجب تقویت آپوپتوز شده و میتوانند نقش سرکوبگر تومور ایفا کنند. اختلال در بیان lncRNAها علاوه بر مشارکت در دگرگونی بدخیمی و ایجاد مقاومت درمانی، با پیامدهای بالینی و پیشآگهی بیماران نیز مرتبط است.
نتیجه گیری: جمعبندی مطالعات نشان داد که lncRNAها علاوه بر نقش دوگانه در پاتوژنز AML، میتوانند بهعنوان نشانگرهای پیشآگهی و اهداف درمانی نوین نیز مطرح شوند و مسیرهای تازهای برای تحقیقات ترجمانی و مطالعات بالینی آینده فراهم آورند.
شرح مقاله: در سالهای اخیر، RNAهای طویل غیرکدکننده (lncRNAs) بهعنوان تنظیمکنندههای بیان ژن و فرایندهای سلولی از جمله تکثیر، تمایز، آپوپتوز و مقاومت دارویی موردتوجه قرار گرفتهاند. یکی از مکانیسمهای مهم اثرگذاری lncRNAها، عمل بهعنوان RNAهای رقیب درونزا (ceRNA) است که با جذب miRNAها، بیان ژنهای مرتبط با آپوپتوز را تنظیم میکنند. در این مقاله مروری، شواهد موجود در زمینه نقش lncRNAها در تنظیم آپوپتوز در سلولهای AML گردآوری و تحلیل شده است. مطالعات اخیر نشان میدهد که برخی از lncRNAها مانند HOTAIR، UCA1، TUG1 و H19 با مهار آپوپتوز به پیشرفت لوسمی کمک میکنند، درحالیکه برخی دیگر نظیر NEAT1 و DUXAP8 موجب تقویت آپوپتوز شده و میتوانند نقش سرکوبگر تومور ایفا کنند. اختلال در بیان lncRNAها علاوه بر مشارکت در دگرگونی بدخیمی و ایجاد مقاومت درمانی، با پیامدهای بالینی و پیشآگهی بیماران نیز مرتبط است.
نتیجه گیری: جمعبندی مطالعات نشان داد که lncRNAها علاوه بر نقش دوگانه در پاتوژنز AML، میتوانند بهعنوان نشانگرهای پیشآگهی و اهداف درمانی نوین نیز مطرح شوند و مسیرهای تازهای برای تحقیقات ترجمانی و مطالعات بالینی آینده فراهم آورند.
فهرست منابع
1. Hoffbrand AV, Steensma DP. Hoffbrand's essential haematology. Hoboken, NJ: John Wiley & Sons; 2019.
2. Liu H. Emerging agents and regimens for AML. J Hematol Oncol. 2021;14(1):49. pmid: 33757574 doi: 10.1186/s13045-021-01062-w
3. Döhner H, Weisdorf DJ, Bloomfield CD. Acute myeloid leukemia. N Engl J Med. 2015;373(12):1136-52. pmid: 26376137 doi: 10.1056/NEJMra1406184.
4. Sayyadi M, Safaroghli-Azar A, Rabiemajd S, Didehdar M, Abolghasemi H, Anoushirvani AA, et al. Contribution value of akt, c-myc, cip2a, and pp2a genes expression in leukemogenesis: A bright perspective on the molecular pattern of patients with acute myeloid leukemia (aml). Int J Cancer Manag. 2020;13(3): e100223. doi:10.5812/ijcm.100223
5. Swaminathan M, Wang ES. Novel therapies for AML: a round-up for clinicians. Expert Rev Clin Pharmacol. 2020;13(12):1389-400. pmid: 33412978 doi: 10.1080/17512433.2020.1850255
6. Liu Y, Cheng Z, Pang Y, Cui L, Qian T, Quan L, et al. Role of microRNAs, circRNAs and long noncoding RNAs in acute myeloid leukemia. J Hematol Oncol. 2019;12(1):51. pmid: 31126316 doi: 10.1186/s13045-019-0734-5
7. Gourvest M, Brousset P, Bousquet M. Long noncoding RNAs in acute myeloid leukemia: functional characterization and clinical relevance. Cancers (Basel). 2019;11(11):1638. pmid: 31653018 doi: 10.3390/cancers11111638
8. Huarte M. The emerging role of lncRNAs in cancer. Nat Med. 2015;21(11):1253-61. pmid: 26540387 doi: 10.1038/nm.3981
9. Iyer MK, Niknafs YS, Malik R, Singhal U, Sahu A, Hosono Y, et al. The landscape of long noncoding RNAs in the human transcriptome. Nat Genet. 2015;47(3):199-208. pmid: 25599403 doi: 10.1038/ng.3192
10. Ma H, Hao Y, Dong X, Gong Q, Chen J, Zhang J, et al. Molecular mechanisms and function prediction of long noncoding RNA. ScientificWorldJournal. 2012;2012:541786. pmid: 23319885 doi: 10.1100/2012/541786
11. Garzon R, Volinia S, Papaioannou D, Nicolet D, Kohlschmidt J, Yan PS, et al. Expression and prognostic impact of lncRNAs in acute myeloid leukemia. Proc Natl Acad Sci U S A. 2014;111(52):18679-84. pmid: 25512507 doi: 10.1073/pnas.1422050112
12. Silva A, Bullock M, Calin G. The clinical relevance of long non-coding RNAs in cancer. Cancers (Basel). 2015;7(4):2169-82. pmid: 26516918 doi: 10.3390/cancers7040884
13. Gao J, Wang F, Wu P, Chen Y, Jia Y. Aberrant LncRNA Expression in Leukemia. J Cancer. 2020;11(14):4284-96. pmid: 32368311 doi: 10.7150/jca.42093
14. Wang X, Chen X, Meng Q, Jing H, Lu H, Yang Y, et al. MiR-181b regulates cisplatin chemosensitivity and metastasis by targeting TGFβR1/Smad signaling pathway in NSCLC. Sci Rep. 2015;5:17618. pmid: 26620926 doi: 10.1038/srep17618
15. Engels BM, Hutvagner G. Principles and effects of microRNA-mediated post-transcriptional gene regulation. Oncogene. 2006;25(46):6163-9. pmid: 17028595 doi: 10.1038/sj.onc.1209909
16. Carleton M, Cleary MA, Linsley PS. MicroRNAs and cell cycle regulation. Cell Cycle. 2007;6(17):2127-32. pmid: 17786041 doi: 10.4161/cc.6.17.4641
17. Harfe BD. MicroRNAs in vertebrate development. Current opinion in genetics & development. 2005;15(4):410-5. doi: 10.1016/j.gde.2005.06.012
18. Reynolds L-LNMS. JV The roles of microRNA in cancer and apoptosis. Biol Rev Cambridge Philos Soc. 2009;84(1):55-71. pmid: 19046400 doi: 10.1111/j.1469-185X.2008.00061.x.
19. Soifer HS, Rossi JJ, Sætrom P. MicroRNAs in disease and potential therapeutic applications. Mol Ther. 2007;15(12):2070-9. pmid: 17878899 doi: 10.1038/sj.mt.6300311
20. Zhang Y, Xu Y, Feng L, Li F, Sun Z, Wu T, et al. Comprehensive characterization of lncRNA-mRNA related ceRNA network across 12 major cancers. Oncotarget. 2016;7(39):64148. pmid: 27580177 doi: 10.18632/oncotarget.11637
21. Salmena L, Poliseno L, Tay Y, Kats L, Pandolfi PP. A ceRNA hypothesis: the Rosetta Stone of a hidden RNA language? Cell. 2011;146(3):353-8. doi:10.1016/j.cell.2011.07.014
22. D'Arcy MS. Cell death: a review of the major forms of apoptosis, necrosis and autophagy. Cell Biol Int. 2019;43(6):582-92. pmid: 30958602 doi: 10.1002/cbin.11137
23. Hartman ML. Non-Apoptotic Cell Death Signaling Pathways in Melanoma. Int J Mol Sci. 2020;21(8):2980 . pmid: 32340261 doi: 10.3390/ijms21082980
24. Hassani S, Ghaffari SH, Zaker F, Mirzaee R, Mardani H, Bashash D, et al. Azidothymidine hinders arsenic trioxide-induced apoptosis in acute promyelocytic leukemia cells by induction of p21 and attenuation of G2/M arrest. Ann Hematol. 2013;92(9):1207-20. pmid: 23645216 doi: 10.1007/s00277-013-1763-8
25. Hassani S, Ghaffari P, Chahardouli B, Alimoghaddam K, Ghavamzadeh A, Alizadeh S, et al. Disulfiram/copper causes ROS levels alteration, cell cycle inhibition, and apoptosis in acute myeloid leukaemia cell lines with modulation in the expression of related genes. Biomed Pharmacother. 2018;99:561-9. pmid: 29902866 doi: 10.1016/j.biopha.2018.01.109
26. Yousefi M, Ghaffari SH, Zekri A, Ghanizadeh-Vesali S, Hosseini E, Rostami M, et al. Differential sensitivity of p44/p42-MAPK-and PI3K/Akt-targeted neuroblastoma subtypes to arsenic trioxide. Neurochem Int. 2013;63(8):809-17. pmid: 24161621 doi: 10.1016/j.neuint.2013.10.005.
27. Nasrollahzadeh A, Momeny M, Fasehee H, Yaghmaie M, Bashash D, Hassani S, et al. Anti-proliferative activity of disulfiram through regulation of the AKT-FOXO axis: a proteomic study of molecular targets. Biochim Biophys Acta Mol Cell Res. 2021;1868(10):119087. pmid: 34182011 doi: 10.1016/j.bbamcr.2021.119087
28. Dong X, Xu X, Guan Y. LncRNA LINC00899 promotes progression of acute myeloid leukaemia by modulating miR‐744‐3p/YY1 signalling. Cell Biochem Funct. 2020;38(7):955-64. pmid: 32157707 doi: 10.1002/cbf.3521
29. Khachigian LM. The Yin and Yang of YY1 in tumor growth and suppression. Int J Cancer. 2018;143(3):460-5. pmid: 29322514 doi: 10.1002/ijc.31255
30. Zhao C, Wang S, Zhao Y, Du F, Wang W, Lv P, et al. Long noncoding RNA NEAT1 modulates cell proliferation and apoptosis by regulating miR-23a-3p/SMC1A in acute myeloid leukemia. J Cell Physiol. 2019;234(5):6161-72. pmid: 30246348 doi: 10.1002/jcp.27393
31. Hömme C, Krug U, Tidow N, Schulte B, Kühler G, Serve H, et al. Low SMC1A protein expression predicts poor survival in acute myeloid leukemia. Oncol Rep. 2010;24(1):47-56. pmid: 20514443 doi: 10.3892/or_00000827
32. Sun MD, Zheng YQ, Wang LP, Zhao HT, Yang S. Long noncoding RNA UCA1 promotes cell proliferation, migration and invasion of human leukemia cells via sponging miR-126. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2018;22(8):2233-45. pmid: 29762824 doi: 10.26355/eurrev_201804_14809
33. Zhang B, Zhang Y, Shacter E. Rac1 Inhibits Apoptosis in Human Lymphoma Cells by Stimulating Bad Phosphorylation on Ser-75. Mol Cell Biol. 2004;24(14):6205-14. pmid: 15226424 doi: 10.1128/MCB.24.14.6205-6214.2004
34. Gupta RA, Shah N, Wang KC, Kim J, Horlings HM, Wong DJ, et al. Long non-coding RNA HOTAIR reprograms chromatin state to promote cancer metastasis. Nature. 2010;464(7291):1071-6. pmid: 20393566 doi: 10.1038/nature08975
35. Bhan A, Mandal SS. LncRNA HOTAIR: A master regulator of chromatin dynamics and cancer. Biochim Biophys Acta. 2015;1856(1):151-64. pmid: 26208723 doi: 10.1016/j.bbcan.2015.07.001
36. Xing C-y, Hu X-q, Xie F-y, Yu Z-j, Li H-y, Wu J-b, et al. Long non‐coding RNA HOTAIR modulates c‐KIT expression through sponging miR‐193a in acute myeloid leukemia. FEBS Lett. 2015;589(15):1981-7. pmid: 25979172 doi: 10.1016/j.febslet.2015.04.061
37. Gao S, Zhou B, Li H, Huang X, Wu Y, Xing C, et al. Long noncoding RNA HOTAIR promotes the self-renewal of leukemia stem cells through epigenetic silencing of p15. Exp Hematol. 2018;67:32-40. e3. pmid: 30172749 doi: 10.1016/j.exphem.2018.08.005
38. Wang S-L, Huang Y, Su R, Yu Y-Y. Silencing long non-coding RNA HOTAIR exerts anti-oncogenic effect on human acute myeloid leukemia via demethylation of HOXA5 by inhibiting Dnmt3b. Cancer Cell Int. 2019;19(1):114. pmid: 31168296 doi: 10.1186/s12935-019-0808-z
39. Strathdee G, Sim A, Soutar R, Holyoake TL, Brown R. HOXA5 is targeted by cell-type-specific CpG island methylation in normal cells and during the development of acute myeloid leukaemia. Carcinogenesis. 2007;28(2):299-309. pmid: 16861263 doi: 10.1093/carcin/bgl133
40. Zhao TT, Liu X. LncRNA-H19 inhibits apoptosis of acute myeloid leukemia cells via targeting miR-29a-3p. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019;23(3 Suppl):224-31. pmid: 31389605 doi: 10.26355/eurrev_201908_18651
41. Zhao TF, Jia HZ, Zhang ZZ, Zhao XS, Zou YF, Zhang W, et al. LncRNA H19 regulates ID2 expression through competitive binding to hsa-miR-19a/b in acute myelocytic leukemia. Mol Med Rep. 2017;16(3):3687-93. pmid: 28765931 doi: 10.3892/mmr.2017.7029
42. Zhai H, Zhao J, Pu J, Zhao P, Wei J. LncRNA-DUXAP8 Regulation of the Wnt/β-Catenin Signaling Pathway to Inhibit Glycolysis and Induced Apoptosis in Acute Myeloid Leukemia. Turk J Haematol. 2021;38(4):264-72. pmid: 34431643 doi: 10.4274/tjh.galenos.2021.2020.0769
43. Wang X, Zhang L, Zhao F, Xu R, Jiang J, Zhang C, et al. Long non-coding RNA taurine-upregulated gene 1 correlates with poor prognosis, induces cell proliferation, and represses cell apoptosis via targeting aurora kinase A in adult acute myeloid leukemia. Ann Hematol. 2018;97(8):1375-89. pmid: 29654398 doi: 10.1007/s00277-018-3315-8
44. Luo W, Yu H, Zou X, Ni X, Wei J. Long non-coding RNA taurine-upregulated gene 1 correlates with unfavorable prognosis in patients with refractory or relapsed acute myeloid leukemia treated by purine analogue based chemotherapy regimens. Cancer Biomark. 2018;23(4):485-94. pmid: 30347595 doi: 10.3233/CBM-181405
45. Li Q, Song W, Wang J. TUG1 confers Adriamycin resistance in acute myeloid leukemia by epigenetically suppressing miR-34a expression via EZH2. Biomed Pharmacother. 2019;109:1793-801. pmid: 30551433 doi: 10.1016/j.biopha.2018.11.003
46. Li X-j, Ji M-h, Zhong S-l, Zha Q-b, Xu J-j, Zhao J-h, et al. MicroRNA-34a modulates chemosensitivity of breast cancer cells to adriamycin by targeting Notch1. Arch Med Res. 2012;43(7):514-21. pmid: 23085450 doi: 10.1016/j.arcmed.2012.09.007
47. De Braekeleer E, Douet-Guilbert N, Morel F, Le Bris M-J, Férec C, De Braekeleer M. RUNX1 translocations and fusion genes in malignant hemopathies. Future Oncol. 2011;7(1):77-91. pmid: 21174539 doi: 10.2217/fon.10.158
48. Grimwade D, Hills RK, Moorman AV, Walker H, Chatters S, Goldstone AH, et al. Refinement of cytogenetic classification in acute myeloid leukemia: determination of prognostic significance of rare recurring chromosomal abnormalities among 5876 younger adult patients treated in the United Kingdom Medical Research Council trials. Blood. 2010;116(3):354-65. pmid: 20385793 doi: 10.1182/blood-2009-11-254441
49. Fernando TR, Contreras JR, Zampini M, Rodriguez-Malave NI, Alberti MO, Anguiano J, et al. The lncRNA CASC15 regulates SOX4 expression in RUNX1-rearranged acute leukemia. Mol Cancer. 2017;16(1):126. pmid: 28724437 doi: 10.1186/s12943-017-0692-x
50. Sandoval S, Kraus C, Cho E-C, Cho M, Bies J, Manara E, et al. Sox4 cooperates with CREB in myeloid transformation. Blood. 2012;120(1):155-65. pmid: 22627767 doi: 10.1182/blood-2011-05-357418
51. Ramezani-Rad P, Geng H, Hurtz C, Chan LN, Chen Z, Jumaa H, et al. SOX4 enables oncogenic survival signals in acute lymphoblastic leukemia. Blood. 2013;121(1):148-55. pmid: 23152540 doi: 10.1182/blood-2012-05-428938.
52. Aue G, Du Y, Cleveland SM, Smith SB, Davé UP, Liu D, et al. Sox4 cooperates with PU. 1 haploinsufficiency in murine myeloid leukemia. Blood. 2011;118(17):4674-81. pmid: 21878674 doi: 10.1182/blood-2011-04-351528
53. Zhang H, Alberich-Jorda M, Amabile G, Yang H, Staber PB, Di Ruscio A, et al. Sox4 is a key oncogenic target in C/EBPα mutant acute myeloid leukemia. Cancer Cell. 2013;24(5):575-88. pmid: 24183681 doi: 10.1016/j.ccr.2013.09.018
54. Peng W, Fan H. Long non-coding RNA PANDAR correlates with poor prognosis and promotes tumorigenesis in hepatocellular carcinoma. Biomed Pharmacother. 2015;72:113-8. pmid: 26054684 doi: 10.1016/j.biopha.2015.04.014.
55. Lu M, Liu Z, Li B, Wang G, Li D, Zhu Y. The high expression of long non-coding RNA PANDAR indicates a poor prognosis for colorectal cancer and promotes metastasis by EMT pathway. J Cancer Res Clin Oncol. 2017;143(1):71-81. pmid: 27629879 doi: 10.1007/s00432-016-2252-y.
56. Zhan Y, Lin J, Liu Y, Chen M, Chen X, Zhuang C, et al. Up-regulation of long non-coding RNA PANDAR is associated with poor prognosis and promotes tumorigenesis in bladder cancer. J Exp Clin Cancer Res. 2016;35(1):83. pmid: 27206339 doi: 10.1186/s13046-016-0354-7..
57. Zou Y, Zhong Y, Wu J, Xiao H, Zhang X, Liao X, et al. Long non‐coding PANDAR as a novel biomarker in human cancer: a systematic review. Cell Prolif. 2018;51(1):e12422. pmid: 29226461 doi: 10.1111/cpr.12422
58. Yang L, Zhou J-D, Zhang T-J, Ma J-C, Xiao G-F, Chen Q, et al. Overexpression of lncRNA PANDAR predicts adverse prognosis in acute myeloid leukemia. Cancer Manag Res. 2018;10:4999-5007. pmid: 30464600 doi: 10.2147/CMAR.S180150
59. Ying X, Zhang W, Fang M, Wang C, Han L, Yang C. LncRNA SNHG5 regulates SOX4 expression through competitive binding to miR-489-3p in acute myeloid leukemia. Inflamm Res. 2020;69(6):607-18. pmid: 32266420 doi: 10.1007/s00011-020-01345-x
60. Zhang F, Li Q, Zhu K, Zhu J, Li J, Yuan Y, et al. LncRNA LINC00265/miR-485-5p/IRF2-mediated autophagy suppresses apoptosis in acute myeloid leukemia cells. Am J Transl Res. 2020;12(6):2451-62. pmid: 32655783
61. Zhang F, Zhu J, Li J, Zhu F, Zhang P. IRF2-INPP4B axis participates in the development of acute myeloid leukemia by regulating cell growth and survival. Gene. 2017;627:9-14. pmid: 28579269 doi: 10.1016/j.gene.2017.06.001.
62. Dzneladze I, He R, Woolley JF, Son MH, Sharobim MH, Greenberg SA, et al. INPP4B overexpression is associated with poor clinical outcome and therapy resistance in acute myeloid leukemia. Leukemia. 2015;29(7):1485-95. pmid: 25736236 doi: 10.1038/leu.2015.51.
63. Rijal S, Fleming S, Cummings N, Rynkiewicz NK, Ooms LM, Nguyen NY, et al. Inositol polyphosphate 4-phosphatase II (INPP4B) is associated with chemoresistance and poor outcome in AML. Blood. 2015;125(18):2815-24. pmid: 25736313 doi: 10.1182/blood-2014-09-603555
64. Wang P, Ma D, Wang J, Fang Q, Gao R, Wu W, et al. INPP4B-mediated DNA repair pathway confers resistance to chemotherapy in acute myeloid leukemia. Tumour Biol. 2016;37(9):12513-23. pmid: 27342972 doi: 10.1007/s13277-016-5111-1
65. Cheng P, Lu P, Guan J, Zhou Y, Zou L, Yi X, et al. LncRNA KCNQ1OT1 controls cell proliferation, differentiation and apoptosis by sponging miR-326 to regulate c-Myc expression in acute myeloid leukemia. Neoplasma. 2020;67(2):238-48. doi: 10.4149/neo_2018_181215n972
66. Cappellen D, Schlange T, Bauer M, Maurer F, Hynes NE. Novel c-MYC target genes mediate differential effects on cell proliferation and migration. EMBO Rep. 2007;8(1):70-6. pmid: 17159920 doi: 10.1038/sj.embor.7400849
67. Koh CM, Gurel B, Sutcliffe S, Aryee MJ, Schultz D, Iwata T, et al. Alterations in nucleolar structure and gene expression programs in prostatic neoplasia are driven by the MYC oncogene. Am J Pathol. 2011;178(4):1824-34. pmid: 21435462 doi: 10.1016/j.ajpath.2010.12.040
68. Wang H, Mannava S, Grachtchouk V, Zhuang D, Soengas MS, Gudkov AV, et al. c-Myc depletion inhibits proliferation of human tumor cells at various stages of the cell cycle. Oncogene. 2008;27(13):1905-15. pmid: 17906696 doi: 10.1038/sj.onc.1210823
69. Bashash D, Sayyadi M, Safaroghli-Azar A, Sheikh-Zeineddini N, Riyahi N, Momeny M. Small molecule inhibitor of c-Myc 10058-F4 inhibits proliferation and induces apoptosis in acute leukemia cells, irrespective of PTEN status. Int J Biochem Cell Biol. 2019;108:7-16. pmid: 30639430 doi: 10.1016/j.biocel.2019.01.005.
70. Riyahi N, Safaroghli-Azar A, Sheikh-Zeineddini N, Sayyadi M, Bashash D. Synergistic effects of PI3K and c-Myc co-targeting in acute leukemia: shedding new light on resistance to selective PI3K-δ inhibitor CAL-101. Cancer Investigation. 2019;37(7):311-24.
71. Sayyadi M, Safaroghli-Azar A, Pourbagheri-Sigaroodi A, Abolghasemi H, Anoushirvani AA, Bashash D. c-Myc inhibition using 10058-F4 increased the sensitivity of acute promyelocytic leukemia cells to arsenic trioxide via blunting PI3K/NF-κB axis. Archives of medical research. 2020;51(7):636-44. pmid: 32553459 doi: 10.1016/j.arcmed.2020.06.002
72. Liu C, Liu B, Shen C, Chu X, Luo X, Yu L, et al. [lncRNA CRNDE promotes proliferation and inhibits apoptosis of U937 cells by downregulating miR-136-5p and upregulating MCM5]. Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 2021;37(11):987-95.
73. Agarwal MK, Amin AR, Agarwal ML. DNA replication licensing factor minichromosome maintenance deficient 5 rescues p53-mediated growth arrest. Cancer Res. 2007;67(1):116-21. pmid: 17210690 doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-2835
74. Sayyadi M, Safaroghli-Azar A, Safa M, Abolghasemi H, Momeny M, Bashash D. NF-κB-dependent mechanism of action of c-Myc inhibitor 10058-F4: highlighting a promising effect of c-Myc inhibition in leukemia cells, irrespective of p53 status. Iran J Pharm Res. 2020;19(1):153-65. pmid: 32922477 doi: 10.22037/ijpr.2020.112926.14018
75. Wang X, Li W, Chen Y, Zhou L. Long non‑coding RNA SNHG14 affects the proliferation and apoptosis of childhood acute myeloid leukaemia cells by modulating the miR‑193b‑3p/MCL1 axis. Mol Med Rep. 2021;23(2):90. pmid: 33300066 doi: 10.3892/mmr.2020.11729
76. Michels J, Johnson PWM, Packham G. Mcl-1. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 2005;37(2):267-71. doi: 10.1016/j.biocel.2004.04.007
77. Hassani S, Rostami P, Pourtavakol M, Karamashtiani A, Sayyadi M. Correlation of SNHG7 and BGL3 expression in patients with de novo acute myeloid leukemia; novel insights into lncRNA effect in PI3K signaling context in AML pathogenesis. Biochem Biophys Rep. 2024;40:101850. pmid: 39469045 doi: 10.1016/j.bbrep.2024.101850
78. Weng L, Brown J, Eng C. PTEN induces apoptosis and cell cycle arrest through phosphoinositol-3-kinase/Akt-dependent and -independent pathways. Hum Mol Genet. 2001;10(3):237-42. pmid: 11159942 doi: 10.1093/hmg/10.3.237
79. Jiang Z, Liu T, Wang Y, Li J, Guo L. Effect of lncRNA XIST on acute myeloid leukemia cells via miR-142-5p-PFKP axis. Hematology. 2024;29(1):2306444. pmid: 38305210 doi: 10.1080/16078454.2024.2306444
80. Vora S, Halper JP, Knowles DM. Alterations in the activity and isozymic profile of human phosphofructokinase during malignant transformation in vivo and in vitro: transformation- and progression-linked discriminants of malignancy. Cancer Res. 1985;45(7):2993-3001. pmid: 3159473
81. Wang F, Li L, Zhang Z. Platelet isoform of phosphofructokinase promotes aerobic glycolysis and the progression of non‑small cell lung cancer. Mol Med Rep. 2021;23(1):74. pmid: 33236133 doi: 10.3892/mmr.2020.11712
82. Fu G, Wu H, Wu X, Yang Y, Fan C. LncRNA LBX2-AS1 inhibits acute myeloid leukemia progression through miR-455-5p/MYLIP axis. Heliyon. 2024;10(2):e24812. pmid: 38312562 doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e24812
83. Wang W, Li F, Gan P, Su D, Li G, Dang L, et al. The expression of myosin-regulated light chain interacting protein (MYLIP) in lung cancer and its inhibitory effects on lung carcinomas. Transl Cancer Res. 2021;10(5):2389-98. pmid: 35116554 doi: 10.21037/tcr-21-606.
84. Liu Y, Zhu XY, Liao LL, Zhang ZH, Huang TS, Zhang L, et al. Silencing LINC00987 ameliorates adriamycin resistance of acute myeloid leukemia via miR-4458/HMGA2 axis. Biol Direct. 2024;19(1):49. pmid: 38910243 doi: 10.1186/s13062-024-00490-1
85. Gao X, Dai M, Li Q, Wang Z, Lu Y, Song Z. HMGA2 regulates lung cancer proliferation and metastasis. Thorac Cancer. 2017;8(5):501-10. pmid: 28752530 doi: 10.1111/1759-7714.12476
86. Han C, Qi Y, She Y, Zhang M, Xie H, Zhang J, et al. Long noncoding RNA SENCR facilitates the progression of acute myeloid leukemia through the miR-4731-5p/IRF2 pathway. Pathol Res Pract. 2023;245:154483. doi: 10.1016/j.prp.2023.154483
87. Long X, Jiang H, Liu Z, Liu J, Hu R. Long noncoding RNA LINC00675 drives malignancy in acute myeloid leukemia via the miR-6809 -CDK6 axis. Pathol Res Pract. 2024;255:155221. pmid: 38422911 doi: 10.1016/j.prp.2024.155221.
88. Bellutti F, Tigan AS, Nebenfuehr S, Dolezal M, Zojer M, Grausenburger R, et al. CDK6 Antagonizes p53-Induced Responses during Tumorigenesis. Cancer Discov. 2018;8(7):884-97. pmid: 29899063 doi: 10.1158/2159-8290.CD-17-0912
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
